◎ 李凱茜,杜麗娟,葉艷萍,畢亞楠,李新宇,劉宏程
(云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)與檢測技術(shù)研究所,云南 昆明 650205)
普洱茶是云南省名茶。目前,隨著普洱茶在世界范圍內(nèi)銷量上升,為增加原材料茶葉產(chǎn)量,化學(xué)農(nóng)藥被廣泛用于農(nóng)業(yè)病蟲害防治,有研究指出農(nóng)藥的使用每年均可挽回35%的農(nóng)藥損失[1]。但是長期大量使用農(nóng)藥會造成農(nóng)藥殘留,不僅會導(dǎo)致人和動物慢性中毒,致畸致殘,還會導(dǎo)致環(huán)境中微生物生態(tài)平衡被破壞[2]。普洱茶的發(fā)酵過程中存在多種微生物,黑曲霉的數(shù)量始終處于優(yōu)勢地位,是普洱茶生產(chǎn)加工過程中的優(yōu)勢菌種,也是影響普洱茶風(fēng)味品質(zhì)的重要菌種[3]。黑曲霉產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物1,2,3-三甲氧苯、2-二甲氧基-4-甲基苯等是普洱茶特征香氣的主要成分之一,其產(chǎn)生的有機(jī)酸和酶等物質(zhì)也對普洱茶品質(zhì)有重要影響[4]。
新煙堿型農(nóng)藥是一類尼古丁相關(guān)的神經(jīng)活性殺蟲劑,是當(dāng)前開發(fā)利用最成功的廣譜殺蟲劑[5]。目前,市面上運(yùn)用較為廣泛的新煙堿型農(nóng)藥有吡蟲啉、呋蟲胺、啶蟲脒等[6]。呋蟲胺是第三代新煙堿型殺蟲劑,通過對昆蟲的突出神經(jīng)的阻斷作用使昆蟲死亡[7]。呋蟲胺具有手性,包含了兩個對映體S-(+)-呋蟲胺和R-(-)-呋蟲胺[8]。研究表明,呋蟲胺不同對映體對昆蟲的生物活性不同[9]。例如,S-(+)-呋蟲胺對家蠅的生物活性是R-(-)-呋蟲胺的3.0 ~3.4 倍[10]。在環(huán)境介質(zhì)中,呋蟲胺不同對映體的選擇性代謝降解具有差異性[11]。陳秀等[12]發(fā)現(xiàn)在黃瓜中,S-(+)-呋蟲胺的半衰期為8.3 ~11.7 d,R-(-)-呋蟲胺的半衰期為7.6 ~10.8 d。
土壤中的微生物體及酶促成了元素循環(huán)和生態(tài)系統(tǒng)的新陳代謝,土壤中的酶大部分來自生物體,尤其是微生物體[13]。農(nóng)藥的施用可導(dǎo)致酶活性水平發(fā)生變化,農(nóng)藥自身的理化性質(zhì)、施藥次數(shù)和濃度都可能抑制或激活土壤酶活性[14]。目前,很多國家通過農(nóng)藥對土壤中微生物及酶活性的影響,對農(nóng)藥生態(tài)安全進(jìn)行評價[13]。因此,研究農(nóng)藥對環(huán)境中微生物及酶活性的影響具有重要的意義。
本文以普洱茶中優(yōu)勢菌種黑曲霉為研究對象,研究在第三代新煙堿農(nóng)藥呋蟲胺不同對映體干擾下,黑曲霉中幾種新陳代謝關(guān)鍵酶類酶活性的變化情況,以期為后續(xù)新煙堿型農(nóng)藥應(yīng)用于普洱茶的安全評價及新煙堿型農(nóng)藥的降解提供理論基礎(chǔ)。
普洱曬青毛茶,云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)與檢測技術(shù)研究所;馬鈴薯葡萄糖水(Potato Dextrose Broth,PDB)培養(yǎng)基;馬鈴薯葡萄糖瓊脂(Potato Dxtrose Agar,PDA)培養(yǎng)基;孟加拉紅(虎紅)瓊脂;NaCl(優(yōu)級純);呋蟲胺外消旋體(Rac-(±)-呋蟲胺)(>99%,上海勤路生物技術(shù)有限公司);S-(+)-呋蟲胺(>99%,上海勤路生物技術(shù)有限公司);R-(-)-呋蟲胺(>99%,上海勤路生物技術(shù)有限公司);谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶檢測試劑盒(Solarbio公司);漆酶活性檢測試劑盒(Solarbio 公司);丙二?;D(zhuǎn)移酶(Mal-onyl/Acetyltransferase,MAT)酶聯(lián)免疫分析試劑盒(上海莼試生物有限公司);糖基轉(zhuǎn)移酶(Glycosyltransferases,GTs)酶聯(lián)免疫分析試劑盒(上海莼試生物有限公司)。
PT1600E 勻質(zhì)機(jī)(北京亞歐德鵬科技有限公司);BSA123S-cw 電子天平(德國Sartorius 公司);超純水儀(美國Millipore 公司);HMJ-150 培養(yǎng)箱(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠);HZP-15 振蕩培養(yǎng)箱(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠);SysteeVB-55 滅菌鍋(德國Systee 公司);Alphaclean1300 超凈工作臺(力康科技有限公司);HHWS-150 恒濕恒溫培養(yǎng)箱(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠);HC-2518R 冷凍離高速心機(jī)(安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司);TD5A-WS 高速離心機(jī)(湖南湘儀實(shí)驗(yàn)儀器開發(fā)有限公司);F619703-05 BP 系列精密單道可調(diào)移液器(加拿大BBI);BCD-256KT 冰箱(青島海爾股份有限公司);722S 分光光度計(jì)(上海菁華科教儀器公司);1530-800824 酶標(biāo)儀(德國thermoscientificg 公司);bx51 顯微鏡(olympus 公司)。
1.3.1 黑曲霉菌株篩選
將普洱曬青毛茶在無菌環(huán)境中打碎,放入無菌生理鹽水和裝有小玻璃珠的三角瓶中,在振蕩培養(yǎng)箱中28 ℃搖床振蕩20 min,用無菌生理鹽水將混合液進(jìn)行10 倍、100 倍、1 000 倍稀釋。分別取1 mL 各梯度稀釋液涂布于初篩平板,28 ℃培養(yǎng),挑取黑色或褐色呈菊花狀、邊緣呈半透明或白色的菌落進(jìn)行反復(fù)分離純化,當(dāng)生長菌落形態(tài)特征一致時,用石碳酸復(fù)紅染液染色,進(jìn)行顯微鏡鏡檢,確定其是否純化。純化后的菌株用15%(V/V)的甘油于-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
菌株鑒定委托生工生物工程(上海)股份有限公司。
1.3.2 黑曲霉菌株培養(yǎng)
將黑曲霉菌株分別接種至PDA 和PDB 培養(yǎng)基中,分別取1 mL 20 mg·L-1的Rac-(±)-呋蟲胺、S-(+)-呋蟲胺、R-(-)-呋蟲胺稀釋液均勻噴灑于培養(yǎng)基中,置于28 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)28 d。試驗(yàn)進(jìn)行3 次重復(fù),每天觀察菌落形態(tài)并記錄。
1.3.3 酶活性測定
測定不同時間噴灑了不同呋蟲胺對映體的黑曲霉在生長發(fā)育過程中的幾種新陳代謝關(guān)鍵生物酶活性。①谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶:采用谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶檢測試劑盒測定。②漆酶:采用漆酶活性檢測試劑盒測定。③丙二?;D(zhuǎn)移酶:采用丙二?;D(zhuǎn)移酶酶聯(lián)免疫分析試劑盒測定。④糖基轉(zhuǎn)移酶:采用糖基轉(zhuǎn)移酶酶聯(lián)免疫分析試劑盒測定。
采用軟件Excel 2016 和SPSS 26.0 對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理和單因素方差分析,結(jié)果以3 次重復(fù)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的平均值形式表示。
谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶(Glutathione S-Transferase,GST)是細(xì)胞體內(nèi)解毒酶系統(tǒng)的重要組成之一,使機(jī)體響應(yīng)多種環(huán)境脅迫、保護(hù)機(jī)體免受有毒物質(zhì)的傷害[15]。GST 具有調(diào)控細(xì)胞生長發(fā)育、跨膜運(yùn)輸定位、參與還原過氧化物、保護(hù)細(xì)胞免受氧化損失等功能[16]。由圖1 可知,在28 d 培養(yǎng)周期中,Rac-(±)-和S-(+)-呋蟲胺培養(yǎng)基中生長的黑曲霉GST 活性相對低,尤其在培養(yǎng)后期(16 ~28 d),表明Rac-(±)-和S-(+)-呋蟲胺相較于R-(-)-呋蟲胺對真菌中的GST 有一定的抑制作用。在10 ~16 d,R-(-)-呋蟲胺培養(yǎng)基中GST 酶活性數(shù)值增加較快,由0.059 9 U·mL-1增加到最大值0.074 1 U·mL-1,之后逐漸降低至0.061 3 U·mL-1。S-(+)-呋蟲胺中酶活性在5 ~10 d增長較快,之后有一個較小的波動,在20 d 時增長至最大值0.066 0 U·mL-1,第28 d 降低至0.059 9 U·mL-1。Rac-(±)-呋蟲胺中酶活性值與S-(+)-呋蟲胺中的變化趨勢基本一致。GST 可與外源性化學(xué)物質(zhì)結(jié)合,使親電化合物變成親水物質(zhì),將潛在或具備毒性外源性化學(xué)物質(zhì)降解并排出體外,防止其與細(xì)胞大分子共價結(jié)合對細(xì)胞造成機(jī)械性損傷[17]。因此GST 可與農(nóng)藥結(jié)合,使有機(jī)污染物分解失活并排出體外,從而降低農(nóng)藥對微生物生長的負(fù)面影響。前期農(nóng)藥的添加對GST 有一定的刺激作用,隨著微生物對呋蟲胺不同對映體的不斷分解,GST 酶活性隨著農(nóng)藥的減少而降低。

圖1 不同培養(yǎng)基中黑曲霉的GST 酶活性圖
漆酶是一種多酚氧化酶,漆酶中的銅離子在底物催化過程中可傳遞電子,漆酶還可依靠小分子介質(zhì)形成漆酶-介質(zhì)系統(tǒng),實(shí)現(xiàn)漆酶與底物的電子傳遞,氧化底物[18-19]。漆酶可催化的底物范圍較廣,不僅包括酚類化合物、芳香類化合物等[20],還包括難以氧化的非酚類物質(zhì),如多環(huán)芳香烴、有機(jī)磷農(nóng)藥、有機(jī)氯農(nóng)藥等[21]。由圖2 可知,3 種培養(yǎng)基中的漆酶活性變化趨勢相似,0 ~5 d 酶活性均快速升高,5 ~21 d 酶活性平緩升高,21 d 后酶活性明顯下降。在0 ~10 d R-(-)-呋蟲胺中生長的黑曲霉的漆酶活性值較其他培養(yǎng)基低,由1.111 U·mL-1上升至8.083 U·mL-1,在28 d 時降低到6.910 U·mL-1。這可能是培養(yǎng)初期,農(nóng)藥濃度較高,相較于呋蟲胺其他對映體,R-(-)-呋蟲胺對漆酶有明顯抑制作用,隨著菌株生長發(fā)育,培養(yǎng)基內(nèi)農(nóng)藥被分解,農(nóng)藥濃度降低,R-(-)-呋蟲胺對漆酶的抑制作用減弱。Rac-(±)-和S-(+)-呋蟲胺培養(yǎng)基中的漆酶活性值變化趨勢相似,Rac-(±)-呋蟲胺中酶活性值先由1.573 U·mL-1上升至最大值7.867 U·mL-1,之后下降至7.126 U·mL-1。S-(+)-呋蟲胺中酶活性初始值為2.499 U·mL-1,之后酶活性先上升后下降,在28 d 時降低至7.250 U·mL-1。

圖2 不同培養(yǎng)基中黑曲霉的漆酶酶活性圖
糖基轉(zhuǎn)移酶(Glycosyltransferases,GTs)可將單糖共價連接到多種有機(jī)底物上,參與生命體內(nèi)的糖代謝和糖基化反應(yīng),其催化底物包括糖、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)等[22-23]?,F(xiàn)有研究表明,GTs 在真菌細(xì)胞壁的合成中起到至關(guān)重要的作用,葡聚糖是細(xì)胞壁的重要組成部分,在葡聚糖合成過程中GTs 可通過對其結(jié)構(gòu)的修飾,影響真菌細(xì)胞壁的結(jié)構(gòu)和功能[24]。由圖3 可知,Rac-(±)-呋蟲中的黑曲霉GTs 酶活性值大體上高于S-(+)-和R-(-)-呋蟲胺培養(yǎng)基中的GTs 酶活性值。在黑曲霉生長發(fā)育前中期,需要大量分泌GTs,參與細(xì)胞體內(nèi)新陳代謝、細(xì)胞壁合成,因此酶活性明顯上升。后期菌株生長繁殖減弱,新陳代謝減弱,酶活性逐漸降低。S-(+)-和R-(-)-呋蟲胺培養(yǎng)基中,酶活性均在5 ~12 d 大幅增長,12 ~28 d 數(shù)值浮動較小,酶活性最大值分別為649.4 U·mL-1及631.2 U·mL-1,28 d 時酶活性分別為631.2 U·mL-1和608.4 U·mL-1。Rac-(±)-呋蟲胺中GTs 酶活性值經(jīng)歷了兩個大幅上升的階段,0 ~5 d 其浮動較小,5 ~12 d 酶活性值攀升至650.9 U·mL-1,16 ~21 d 酶活性上升至最高點(diǎn)871.2 U·mL-1,28 d 時酶活性下降至748.8 U·mL-1。這可能是因?yàn)檫幌x胺不同對映體對GTs 均有抑制作用,隨著農(nóng)藥被分解,農(nóng)藥濃度下降,Rac-(±)-呋蟲胺抑制作用較另外兩個對映體明顯減弱,酶活性上升。

圖3 不同培養(yǎng)基中黑曲霉的GTs 酶活性圖
丙二?;D(zhuǎn)移酶(Malonyl Transferase,MAT)是細(xì)胞新陳代謝的關(guān)鍵酶類,其參與了脂肪酸的合成代謝,參與合成TAC 所需的乙酰輔酶A[25]。由圖4 可知,在28 d 培養(yǎng)周期中,R-(-)-、S-(+)-和Rac-(±)-呋蟲胺培養(yǎng)基的MAT 活性值變化趨勢一致,無明顯差異,均平穩(wěn)上升,在16 d 后趨于平穩(wěn),維持在200 U·mL-1左右。

圖4 不同培養(yǎng)基中黑曲霉的MAT 酶活性圖
這可能因?yàn)镸AT 參與了菌株的營養(yǎng)物質(zhì)利用,黑曲霉菌株在液體培養(yǎng)基中的前中期生物量逐漸增大,能夠通過分泌更多的酶類,加快有機(jī)質(zhì)的降解,MAT 酶活性也隨之呈上升趨勢。后期隨著培養(yǎng)基內(nèi)營養(yǎng)物質(zhì)的減少,菌絲生長速度開始下降,酶活性隨之趨于平緩。MAT 酶活性在一定程度上可反映菌株活力。
對普洱茶優(yōu)勢菌種黑曲霉進(jìn)行分離純化,分別接種于噴灑了R-(-)-呋蟲胺、S-(+)-呋蟲胺和呋蟲胺外消旋體(Rac-(±)-呋蟲胺)的培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),并測定不同時間不同培養(yǎng)基中黑曲霉在生長發(fā)育過程中的幾種新陳代謝關(guān)鍵生物酶活性。結(jié)果表明,呋蟲胺對映體對漆酶活性抑制作用的排序?yàn)镽-(-)-呋蟲胺>S-(+)-呋蟲胺、Rac-(±)-呋蟲胺,對谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶抑制作用的排序?yàn)镾-(+)-呋蟲胺、Rac-(±)-呋蟲胺>R-(-)-呋蟲胺;對糖基轉(zhuǎn)移酶抑制作用的排序?yàn)镾-(+)-呋蟲胺、R-(-)-呋蟲胺>Rac-(±)-呋蟲胺;對丙二酰基轉(zhuǎn)移酶的抑制作用,R-(-)-呋蟲胺、S-(+)-呋蟲胺和Rac-(±)-呋蟲胺無明顯區(qū)別。呋蟲胺不同對映體對同種酶活性影響存在差異性,下一步可進(jìn)行呋蟲胺不同對映體在不同酶條件下的降解情況及降解機(jī)制的深入研究。手性農(nóng)藥不同異構(gòu)體對普洱茶中微生物及酶的影響有重要的意義,可為普洱茶安全評價和手性農(nóng)藥殘留降解提供新的思路。