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基于二氧化硅球腔微電極陣列的過氧化氫生物傳感器制備

2011-04-12 00:00:00周麗娟尹凡周宇
分析化學(xué) 2011年9期

摘 要 以聚苯乙烯(PS)微球陣列為模板,采用溶膠-凝膠法在氧化銦錫(ITO)電極上制備了二氧化硅(SiO2)球腔陣列,掃描電鏡顯示此方法制備的SiO2球腔陣列高度有序。電化學(xué)研究結(jié)果表明,該球腔陣列的循環(huán)伏安曲線符合微電極陣列的電化學(xué)特點(diǎn)。將血紅蛋白(Hb)作為氧化還原模型蛋白直接吸附于球腔內(nèi),制得電流型過氧化氫(H2O2)生物傳感器,研究了Hb在該微電極陣列上的直接電化學(xué)和電催化性質(zhì)。所構(gòu)建的傳感器對H2O2的響應(yīng)快速靈敏,其線性范圍為2.03×10-6~1.21×10-5 mol/L和2.03×10-5~1.21×10-2 mol/L;檢出限為5.73×10-7 mol/L,米氏常數(shù)為0.266 mmol/L。

關(guān)鍵詞 溶膠-凝膠法; 二氧化硅球腔; 微電極陣列; 血紅蛋白; 生物傳感器

1 引 言

由于電化學(xué)生物傳感器具有靈敏高、選擇性好、測定快速、結(jié)構(gòu)簡單、價(jià)廉、能耗低且易于微型化和集成化等優(yōu)點(diǎn),被認(rèn)為是在時(shí)效、成本等高限定場合實(shí)現(xiàn)生物檢測的首選技術(shù)之一。然而,常規(guī)電極的檢出限受待測物質(zhì)傳質(zhì)速率和電極表面雙電層充放電電流的限制,對痕量物質(zhì)難以給出響應(yīng),限制了其在痕量分析中的應(yīng)用。工作電極微型化是降低傳感器檢出限的有效手段之一。隨著電極尺寸的減小,物質(zhì)從本體溶液到電極表面的擴(kuò)散可由平面擴(kuò)散變?yōu)閺较驍U(kuò)散,改善了待測物質(zhì)的傳質(zhì),電極面積的減小也有效降低了電極表面雙電層充放電電流,提高了測定信號的信噪比。通常單支微電極的響應(yīng)信號很微弱,可通過將多支微電極并聯(lián)組成的微電極陣列解決該缺點(diǎn)。微電極陣列不僅能有效放大響應(yīng)電流,還可保留單支微電極電化學(xué)特性,從而可在常規(guī)電化學(xué)儀器上獲得滿意的結(jié)果。

常見的微電極陣列的制備方法有自組裝法、刻蝕法和模板法等。這些方法通常需要昂貴的精密儀器或設(shè)備,制備條件繁雜苛刻,難以得到大規(guī)模的應(yīng)用。本研究小組曾以聚苯乙烯(PS)微球陣列為模板制備了二維氧化鋅(ZnO)球腔陣列,并證明了ZnO球腔電阻梯度的存在使球腔陣列具備了“軟”微電極陣列的功能,電化學(xué)反應(yīng)只在每個(gè)球腔的底部發(fā)生。本研究利用溶膠-凝膠法在氧化銦錫(ITO)電極表面制備規(guī)則有序、結(jié)構(gòu)完整的二氧化硅(SiO2)球腔陣列,該陣列的電化學(xué)行為類似于微電極陣列。將血紅蛋白(Hb)直接吸附于球腔內(nèi)部制備H2O2生物傳感器。結(jié)果表明,固定在SiO2球腔陣列內(nèi)部的Hb能保持良好的電化學(xué)活性,此傳感器對H2O2的響應(yīng)快速靈敏。本方法可方便調(diào)控球腔陣列密度,有望應(yīng)用于生物傳感器的設(shè)計(jì)。

2實(shí)驗(yàn)部分

2.1 儀器與試劑

612D型Langmuir槽(英國NIMA公司);KYKY2800型數(shù)字化掃描電子顯微鏡(中國研究院北京科學(xué)儀器研制中心);CHI660c電化學(xué)工作站(上海辰華儀器有限公司);2xz-2型旋片式真空泵(上海儀表集團(tuán)供銷公司)。將3 mg Hb(Sigma公司)溶于1 mL PBS(pH 7.0)溶液中,配成3 g/L Hb溶液。無水乙醇、丙酮、正硅酸乙酯(TEOS)、30% H2O2、NaOH均為分析純(上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);ITO玻璃電阻小于100 Ω(蘇州板硝子電子有限公司)。實(shí)驗(yàn)用水均為二次蒸餾水。

2.2 ITO電極的處理及PS微球模板的制備

用乳液聚合法制備PS微球,粒徑約為1500 nm \\。PS微球模板的制備方法同文獻(xiàn)\\。

2.3 溶膠的制備

將5 mL TEOS與60 mL乙醇混合,放入恒溫磁力攪拌器中劇烈攪拌,將6 mL水和1 mL 0.05 mol/L NaOH混合溶液用滴管慢慢加入,攪拌10 min后轉(zhuǎn)移至容量瓶超聲1 h,放置過夜。

2.4 Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列的制備

將修飾有PS微球單層膜的ITO電極放在制備好的SiO2溶膠液中,在真空干燥器中抽真空9 min(抽氣速率2 L/S,真空度﹤1.33 Pa),使微球與模板空隙中的空氣排出。當(dāng)體系恢復(fù)到常壓時(shí),溶膠即填充到微球的空隙中。取出后于室溫干燥,再重復(fù)此過程一次。用乙酸乙酯除去PS微球,即得SiO2球腔微電極陣列。取10

L 3 g/L Hb溶液涂于SiO2球腔微電極陣列表面,置于冰箱中4 ℃干燥保存。使用前在PBS(pH 7.0)中洗掉附著不牢固的Hb,得到用于測定H2O2的生物傳感器,制備示意圖見圖1。

分 析 化 學(xué)第39卷

第9期周麗娟等: 基于二氧化硅球腔微電極陣列的過氧化氫生物傳感器制備

圖1 Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列制備過程示意圖

Fig.1 Schematic illustrations of fabrication of hemoglobin (Hb)/SiO2 cavities/indium-tin oxide (ITO) microelectrode array

2.5 實(shí)驗(yàn)方法

電化學(xué)測試采用三電極體系: 飽和甘汞電極為參比電極,鉑片(2 mm×7 mm)為輔助電極,修飾ITO的電極陣列為工作電極。采用循環(huán)伏安(CV)法研究該電極上Hb的直接電化學(xué)和電催化性質(zhì)時(shí)先用氮?dú)猓∟2)除氧30 min,測試時(shí)PBS溶液保持N2氛圍,于室溫下測試。

3 結(jié)果與討論

3.1 SiO2球腔陣列表面形貌表征及其電化學(xué)

圖2為SiO2球腔陣列的形貌及電化學(xué)特性。SiO2球腔陣列具有較好的有序性(圖2A),相鄰球腔中心之間的間距約1500 nm,與PS微球的直徑相當(dāng)。SiO2凝膠為籠狀結(jié)構(gòu),在電解質(zhì)溶液中具有一定的導(dǎo)電性,其電阻的大小與層厚相關(guān)。SiO2球腔底部的凝膠層最薄,甚至可能存在缺陷,使ITO電極表面直接暴露在溶液中,因而球腔底部導(dǎo)電性最好,電化學(xué)反應(yīng)優(yōu)先在球腔底部發(fā)生。與相同面積的裸ITO電極(圖2B-a)相比,F(xiàn)e(CN)3-/4-6電對在SiO2球腔修飾ITO電極氧化還原電流減小,CV曲線呈現(xiàn)S型(圖2B-b),與微電極陣列的CV行為相似,表明傳質(zhì)過程主要為徑向擴(kuò)散,在極短時(shí)間內(nèi)即可達(dá)到穩(wěn)態(tài)。因此,可認(rèn)為該球腔陣列為微電極陣列。由圖2C可見,在較高的掃速下可以得到純徑向擴(kuò)散的S型CV圖,單電極的徑向擴(kuò)散場之間不發(fā)生重疊。但在較低掃速(﹤50 mV/s)下出現(xiàn)峰形CV曲線,說明相鄰微電極之間的擴(kuò)散層存在一定交迭。根據(jù)相鄰球腔中心間距,此條件下擴(kuò)散層厚度約為750 nm。球腔微電極陣列擴(kuò)散示意圖見圖2D。

圖2 (A)SiO2球腔陣列的SEM圖, (B)不同電極的CV圖, (C)SiO2球腔在不同掃速下的CV圖 (D)SiO2球腔微陣列電極的擴(kuò)散示意圖

Fig.2 (A) SEM images of SiO2 cavities array; (B) Cyclic voltammograms of different electrodes; (C) Cyclic voltammograms of SiO2 cavities array at different scan rates; (D) Schematic illustration of radial diffuse on SiO2 cavities array

0.1 mol/L KCl-1 mmol/L K3\\, 掃速(Scan rate): 100 mV/s。 a. ITO裸電極(ITO bare electrode); b. SiO2球腔陣列(SiO2 cavities array);v (1~8): 25, 50, 75, 100, 150, 200, 250 and 300 mV/s.

3.2 Hb修飾SiO2球腔微電極陣列的直接電化學(xué)及對H2O2的電催化

不同修飾電極的電化學(xué)行為見圖3。直接吸附Hb的ITO電極雖也能觀察到Hb的電子轉(zhuǎn)移現(xiàn)象,但其氧化還原峰并不明顯(圖3a)。可能是大部分吸附在電極表面的Hb發(fā)生了變性,阻礙了電活性中心與電極表面的直接電子轉(zhuǎn)移。未修飾Hb的SiO2球腔微電極陣列無氧化還原峰(圖3b),而吸附有Hb的SiO2球腔微電極陣列在-0.20 V左右可見一對明顯的氧化還原峰(圖3c),該氧化還原峰是Hb中血紅素輔基Fe/Fe(Ⅱ)電對得失電子所致。 圖3 不同電極的CV圖

Fig.3 Cyclic voltammograms of different electrodes

0.1 mol/L PBS (pH7.0)+0.1 mol/L KCl, 掃速(Scan rate): 100 mV/s. a. Hb/ITO 電極(Hb/ITO electrode); b. SiO2球腔/ITO微電極陣列(SiO2 cavities/ITO microelectrode array); c. Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列(Hb/SiO2 cavities/ITO microelectrode array)。 這個(gè)現(xiàn)象可以解釋為SiO2球腔親水性微環(huán)境有利于蛋白質(zhì)保持其天然構(gòu)型,而SiO2球腔底部微納反應(yīng)區(qū)對Hb的直接電子轉(zhuǎn)移起到了促進(jìn)作用。還原峰電位(Epc)為-0.251 V,氧化峰電位(Epa)為-0.152 V,ΔEp為99 mV,說明該電極反應(yīng)是準(zhǔn)可逆的。氧化還原式電位(E0)為-0.202 V,與文獻(xiàn)\\報(bào)道的Hb在3D金球腔修飾電極的電位接近。當(dāng)溶液中H2O2加入濃度為3.3 mmol/L時(shí),還原峰峰電流由1.45

A增加到2.19

A(圖4),表明修飾在SiO2球腔微電極陣列上的Hb對H2O2的還原具有明顯的電催化作用。Hb對H2O2還原的電催化過程可表示為: 

H2O2+2HbFe2HbFe+2H2O

3.3 溶液pH及工作電位的選擇

在pH 5.0~9.0范圍內(nèi),Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列的CV圖均呈現(xiàn)一對峰型良好的氧化-還原峰。考慮到蛋白質(zhì)在近中性條件下能更好保持其活性, 故后續(xù)研究中選擇pH 7.0。

在不同的工作電位下, 傳感器對H2O2的響應(yīng)不同。隨著工作電位由0.2 V減小到-0.3 V時(shí),電流響應(yīng)快速增大; 當(dāng)電位小于-0.3 V,電流增加趨勢變緩。考慮到工作電位越負(fù),電活性物質(zhì)的干擾性越強(qiáng),故本研究選擇-0.3 V為工作電位。

3.4 線性范圍與檢出限

圖5為連續(xù)加入H2O2溶液時(shí)Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列的電流響應(yīng)曲線。加入H2O2后,該電極陣列在6 s內(nèi)即可達(dá)到穩(wěn)態(tài)。峰電流與H2O2濃度在較低濃度和較高濃度時(shí)呈現(xiàn)不同的線性關(guān)系(圖5,插圖)。在2.03×10-6~1.20×10-5mol/L濃度范圍內(nèi),線性回歸方程為Ipa(

A)=0.003770+0.6194C(mol/L),r為0.9982;在1.20×10-5~1.21×10-2mol/L范圍內(nèi),線性回歸方程為I(xiàn)pa(

A)=0.1172+0.3830C(mol/L),r為0.9979。檢出限為5.73×10-7 mol/L。采用Lineweaver-Burk方程:1/Iss=1/Imax+K mapp/(ImaxC)估算出Hb催化H2O2的米氏常數(shù)為0.266 mmol/L。與相關(guān)報(bào)道[12~18]相比,該修飾電極陣列對H2O2具有良好的催化活性,且檢出限更低(表1)。

圖4 Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列對H2O2的電催化

Fig.4 Electrocatalysis of Hb/SiO2 cavities/ITO microelectrode arrays for H2O2

0.1 mol/L PBS (pH 7.0)+0.1 mol/L KCl, 掃速(Scan rate): 100 mV/s. a. Without H2O2; b. 3.3 mmol/L H2O2.

圖5 生物傳感器對連續(xù)加入的H2O2后的電流-時(shí)間響應(yīng)曲線 (插圖: H2O2的峰電流與其濃度的校準(zhǔn)曲線)

Fig.5 Typical current-time response curve of the biosensor with successive additions of H2O2 (Inset : Calibration curve between current and H2O2 concentration)

0.1 mol/L PBS(pH 7.0)+0.1 mol/L KCl; 工作電位(Applied potential): -0.3 V.

3.5 Hb修飾SiO2球腔微電極陣列的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性

將Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列浸入除氧后的0.1 mol/L PBS(pH 7.0)中,在掃速為100 mV/s的條件下,連續(xù)掃描100圈,CV還原峰電流相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.38%。在H2O2濃度為3.3 mmol/L時(shí),平行測定10次,CV還原峰電流相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.6%。所制備的傳感器在4 ℃的冰箱中保存30 d后測定,能保持原來響應(yīng)電流的80%。結(jié)果表明,Hb修飾SiO2球腔微電極陣列具有良好的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性。

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Abstract A silicon dioxide (SiO2) cavities array was fabricated on indium-tin oxide (ITO) electrode surface with the template of the polystyrene(PS) particles array by using sol-gel technique. The morphology of SiO2 cavities array was highly ordered which was obtained by scanning electrode microscope. The results of electrochemistrical study showed that the cyclic voltammetric (CV) curve of SiO2 cavities array was in accordance with that of microelectrodes array. Using hemoglobin (Hb) as model protein, an amperometric biosensor for detection of H2O2 was prepared by adsorbing Hb in SiO2 cavities directly. The properties of direct electrochemistry and electrocatalysis of Hb were studied by CV method. The response of the biosensor for H2O2 was fast. A linear relationship between current response and the concentration of H2O2 ranging from 2.03×10-6 to 1.21×10-2 mol/L was obtained with a detection limit of 5.73×10-7 mol/L. And the apparent Michaelis-Menten constant was 0.266 mmol/L.

Keywords Sol-gel technique; Silicon dioxide cavities; Microelectrode array; Hemoglobin; Biosensor

(Received 18 November 2010; accepted 1 March 2011)

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