摘 要 以聚苯乙烯(PS)微球陣列為模板,采用溶膠-凝膠法在氧化銦錫(ITO)電極上制備了二氧化硅(SiO2)球腔陣列,掃描電鏡顯示此方法制備的SiO2球腔陣列高度有序。電化學(xué)研究結(jié)果表明,該球腔陣列的循環(huán)伏安曲線符合微電極陣列的電化學(xué)特點(diǎn)。將血紅蛋白(Hb)作為氧化還原模型蛋白直接吸附于球腔內(nèi),制得電流型過氧化氫(H2O2)生物傳感器,研究了Hb在該微電極陣列上的直接電化學(xué)和電催化性質(zhì)。所構(gòu)建的傳感器對H2O2的響應(yīng)快速靈敏,其線性范圍為2.03×10-6~1.21×10-5 mol/L和2.03×10-5~1.21×10-2 mol/L;檢出限為5.73×10-7 mol/L,米氏常數(shù)為0.266 mmol/L。
關(guān)鍵詞 溶膠-凝膠法; 二氧化硅球腔; 微電極陣列; 血紅蛋白; 生物傳感器
1 引 言
由于電化學(xué)生物傳感器具有靈敏高、選擇性好、測定快速、結(jié)構(gòu)簡單、價(jià)廉、能耗低且易于微型化和集成化等優(yōu)點(diǎn),被認(rèn)為是在時(shí)效、成本等高限定場合實(shí)現(xiàn)生物檢測的首選技術(shù)之一。然而,常規(guī)電極的檢出限受待測物質(zhì)傳質(zhì)速率和電極表面雙電層充放電電流的限制,對痕量物質(zhì)難以給出響應(yīng),限制了其在痕量分析中的應(yīng)用。工作電極微型化是降低傳感器檢出限的有效手段之一。隨著電極尺寸的減小,物質(zhì)從本體溶液到電極表面的擴(kuò)散可由平面擴(kuò)散變?yōu)閺较驍U(kuò)散,改善了待測物質(zhì)的傳質(zhì),電極面積的減小也有效降低了電極表面雙電層充放電電流,提高了測定信號的信噪比。通常單支微電極的響應(yīng)信號很微弱,可通過將多支微電極并聯(lián)組成的微電極陣列解決該缺點(diǎn)。微電極陣列不僅能有效放大響應(yīng)電流,還可保留單支微電極電化學(xué)特性,從而可在常規(guī)電化學(xué)儀器上獲得滿意的結(jié)果。
常見的微電極陣列的制備方法有自組裝法、刻蝕法和模板法等。這些方法通常需要昂貴的精密儀器或設(shè)備,制備條件繁雜苛刻,難以得到大規(guī)模的應(yīng)用。本研究小組曾以聚苯乙烯(PS)微球陣列為模板制備了二維氧化鋅(ZnO)球腔陣列,并證明了ZnO球腔電阻梯度的存在使球腔陣列具備了“軟”微電極陣列的功能,電化學(xué)反應(yīng)只在每個(gè)球腔的底部發(fā)生。本研究利用溶膠-凝膠法在氧化銦錫(ITO)電極表面制備規(guī)則有序、結(jié)構(gòu)完整的二氧化硅(SiO2)球腔陣列,該陣列的電化學(xué)行為類似于微電極陣列。將血紅蛋白(Hb)直接吸附于球腔內(nèi)部制備H2O2生物傳感器。結(jié)果表明,固定在SiO2球腔陣列內(nèi)部的Hb能保持良好的電化學(xué)活性,此傳感器對H2O2的響應(yīng)快速靈敏。本方法可方便調(diào)控球腔陣列密度,有望應(yīng)用于生物傳感器的設(shè)計(jì)。
2實(shí)驗(yàn)部分
2.1 儀器與試劑
612D型Langmuir槽(英國NIMA公司);KYKY2800型數(shù)字化掃描電子顯微鏡(中國研究院北京科學(xué)儀器研制中心);CHI660c電化學(xué)工作站(上海辰華儀器有限公司);2xz-2型旋片式真空泵(上海儀表集團(tuán)供銷公司)。將3 mg Hb(Sigma公司)溶于1 mL PBS(pH 7.0)溶液中,配成3 g/L Hb溶液。無水乙醇、丙酮、正硅酸乙酯(TEOS)、30% H2O2、NaOH均為分析純(上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);ITO玻璃電阻小于100 Ω(蘇州板硝子電子有限公司)。實(shí)驗(yàn)用水均為二次蒸餾水。
2.2 ITO電極的處理及PS微球模板的制備
用乳液聚合法制備PS微球,粒徑約為1500 nm \\。PS微球模板的制備方法同文獻(xiàn)\\。
2.3 溶膠的制備
將5 mL TEOS與60 mL乙醇混合,放入恒溫磁力攪拌器中劇烈攪拌,將6 mL水和1 mL 0.05 mol/L NaOH混合溶液用滴管慢慢加入,攪拌10 min后轉(zhuǎn)移至容量瓶超聲1 h,放置過夜。
2.4 Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列的制備
將修飾有PS微球單層膜的ITO電極放在制備好的SiO2溶膠液中,在真空干燥器中抽真空9 min(抽氣速率2 L/S,真空度﹤1.33 Pa),使微球與模板空隙中的空氣排出。當(dāng)體系恢復(fù)到常壓時(shí),溶膠即填充到微球的空隙中。取出后于室溫干燥,再重復(fù)此過程一次。用乙酸乙酯除去PS微球,即得SiO2球腔微電極陣列。取10
L 3 g/L Hb溶液涂于SiO2球腔微電極陣列表面,置于冰箱中4 ℃干燥保存。使用前在PBS(pH 7.0)中洗掉附著不牢固的Hb,得到用于測定H2O2的生物傳感器,制備示意圖見圖1。
分 析 化 學(xué)第39卷
第9期周麗娟等: 基于二氧化硅球腔微電極陣列的過氧化氫生物傳感器制備
圖1 Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列制備過程示意圖
Fig.1 Schematic illustrations of fabrication of hemoglobin (Hb)/SiO2 cavities/indium-tin oxide (ITO) microelectrode array
2.5 實(shí)驗(yàn)方法
電化學(xué)測試采用三電極體系: 飽和甘汞電極為參比電極,鉑片(2 mm×7 mm)為輔助電極,修飾ITO的電極陣列為工作電極。采用循環(huán)伏安(CV)法研究該電極上Hb的直接電化學(xué)和電催化性質(zhì)時(shí)先用氮?dú)猓∟2)除氧30 min,測試時(shí)PBS溶液保持N2氛圍,于室溫下測試。
3 結(jié)果與討論
3.1 SiO2球腔陣列表面形貌表征及其電化學(xué)
圖2為SiO2球腔陣列的形貌及電化學(xué)特性。SiO2球腔陣列具有較好的有序性(圖2A),相鄰球腔中心之間的間距約1500 nm,與PS微球的直徑相當(dāng)。SiO2凝膠為籠狀結(jié)構(gòu),在電解質(zhì)溶液中具有一定的導(dǎo)電性,其電阻的大小與層厚相關(guān)。SiO2球腔底部的凝膠層最薄,甚至可能存在缺陷,使ITO電極表面直接暴露在溶液中,因而球腔底部導(dǎo)電性最好,電化學(xué)反應(yīng)優(yōu)先在球腔底部發(fā)生。與相同面積的裸ITO電極(圖2B-a)相比,F(xiàn)e(CN)3-/4-6電對在SiO2球腔修飾ITO電極氧化還原電流減小,CV曲線呈現(xiàn)S型(圖2B-b),與微電極陣列的CV行為相似,表明傳質(zhì)過程主要為徑向擴(kuò)散,在極短時(shí)間內(nèi)即可達(dá)到穩(wěn)態(tài)。因此,可認(rèn)為該球腔陣列為微電極陣列。由圖2C可見,在較高的掃速下可以得到純徑向擴(kuò)散的S型CV圖,單電極的徑向擴(kuò)散場之間不發(fā)生重疊。但在較低掃速(﹤50 mV/s)下出現(xiàn)峰形CV曲線,說明相鄰微電極之間的擴(kuò)散層存在一定交迭。根據(jù)相鄰球腔中心間距,此條件下擴(kuò)散層厚度約為750 nm。球腔微電極陣列擴(kuò)散示意圖見圖2D。
圖2 (A)SiO2球腔陣列的SEM圖, (B)不同電極的CV圖, (C)SiO2球腔在不同掃速下的CV圖 (D)SiO2球腔微陣列電極的擴(kuò)散示意圖
Fig.2 (A) SEM images of SiO2 cavities array; (B) Cyclic voltammograms of different electrodes; (C) Cyclic voltammograms of SiO2 cavities array at different scan rates; (D) Schematic illustration of radial diffuse on SiO2 cavities array
0.1 mol/L KCl-1 mmol/L K3\\, 掃速(Scan rate): 100 mV/s。 a. ITO裸電極(ITO bare electrode); b. SiO2球腔陣列(SiO2 cavities array);v (1~8): 25, 50, 75, 100, 150, 200, 250 and 300 mV/s.
3.2 Hb修飾SiO2球腔微電極陣列的直接電化學(xué)及對H2O2的電催化
不同修飾電極的電化學(xué)行為見圖3。直接吸附Hb的ITO電極雖也能觀察到Hb的電子轉(zhuǎn)移現(xiàn)象,但其氧化還原峰并不明顯(圖3a)。可能是大部分吸附在電極表面的Hb發(fā)生了變性,阻礙了電活性中心與電極表面的直接電子轉(zhuǎn)移。未修飾Hb的SiO2球腔微電極陣列無氧化還原峰(圖3b),而吸附有Hb的SiO2球腔微電極陣列在-0.20 V左右可見一對明顯的氧化還原峰(圖3c),該氧化還原峰是Hb中血紅素輔基Fe/Fe(Ⅱ)電對得失電子所致。 圖3 不同電極的CV圖
Fig.3 Cyclic voltammograms of different electrodes
0.1 mol/L PBS (pH7.0)+0.1 mol/L KCl, 掃速(Scan rate): 100 mV/s. a. Hb/ITO 電極(Hb/ITO electrode); b. SiO2球腔/ITO微電極陣列(SiO2 cavities/ITO microelectrode array); c. Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列(Hb/SiO2 cavities/ITO microelectrode array)。 這個(gè)現(xiàn)象可以解釋為SiO2球腔親水性微環(huán)境有利于蛋白質(zhì)保持其天然構(gòu)型,而SiO2球腔底部微納反應(yīng)區(qū)對Hb的直接電子轉(zhuǎn)移起到了促進(jìn)作用。還原峰電位(Epc)為-0.251 V,氧化峰電位(Epa)為-0.152 V,ΔEp為99 mV,說明該電極反應(yīng)是準(zhǔn)可逆的。氧化還原式電位(E0)為-0.202 V,與文獻(xiàn)\\報(bào)道的Hb在3D金球腔修飾電極的電位接近。當(dāng)溶液中H2O2加入濃度為3.3 mmol/L時(shí),還原峰峰電流由1.45
A增加到2.19
A(圖4),表明修飾在SiO2球腔微電極陣列上的Hb對H2O2的還原具有明顯的電催化作用。Hb對H2O2還原的電催化過程可表示為:
H2O2+2HbFe2HbFe+2H2O
3.3 溶液pH及工作電位的選擇
在pH 5.0~9.0范圍內(nèi),Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列的CV圖均呈現(xiàn)一對峰型良好的氧化-還原峰。考慮到蛋白質(zhì)在近中性條件下能更好保持其活性, 故后續(xù)研究中選擇pH 7.0。
在不同的工作電位下, 傳感器對H2O2的響應(yīng)不同。隨著工作電位由0.2 V減小到-0.3 V時(shí),電流響應(yīng)快速增大; 當(dāng)電位小于-0.3 V,電流增加趨勢變緩。考慮到工作電位越負(fù),電活性物質(zhì)的干擾性越強(qiáng),故本研究選擇-0.3 V為工作電位。
3.4 線性范圍與檢出限
圖5為連續(xù)加入H2O2溶液時(shí)Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列的電流響應(yīng)曲線。加入H2O2后,該電極陣列在6 s內(nèi)即可達(dá)到穩(wěn)態(tài)。峰電流與H2O2濃度在較低濃度和較高濃度時(shí)呈現(xiàn)不同的線性關(guān)系(圖5,插圖)。在2.03×10-6~1.20×10-5mol/L濃度范圍內(nèi),線性回歸方程為Ipa(
A)=0.003770+0.6194C(mol/L),r為0.9982;在1.20×10-5~1.21×10-2mol/L范圍內(nèi),線性回歸方程為I(xiàn)pa(
A)=0.1172+0.3830C(mol/L),r為0.9979。檢出限為5.73×10-7 mol/L。采用Lineweaver-Burk方程:1/Iss=1/Imax+K mapp/(ImaxC)估算出Hb催化H2O2的米氏常數(shù)為0.266 mmol/L。與相關(guān)報(bào)道[12~18]相比,該修飾電極陣列對H2O2具有良好的催化活性,且檢出限更低(表1)。
圖4 Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列對H2O2的電催化
Fig.4 Electrocatalysis of Hb/SiO2 cavities/ITO microelectrode arrays for H2O2
0.1 mol/L PBS (pH 7.0)+0.1 mol/L KCl, 掃速(Scan rate): 100 mV/s. a. Without H2O2; b. 3.3 mmol/L H2O2.
圖5 生物傳感器對連續(xù)加入的H2O2后的電流-時(shí)間響應(yīng)曲線 (插圖: H2O2的峰電流與其濃度的校準(zhǔn)曲線)
Fig.5 Typical current-time response curve of the biosensor with successive additions of H2O2 (Inset : Calibration curve between current and H2O2 concentration)
0.1 mol/L PBS(pH 7.0)+0.1 mol/L KCl; 工作電位(Applied potential): -0.3 V.
3.5 Hb修飾SiO2球腔微電極陣列的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性
將Hb/SiO2球腔/ITO微電極陣列浸入除氧后的0.1 mol/L PBS(pH 7.0)中,在掃速為100 mV/s的條件下,連續(xù)掃描100圈,CV還原峰電流相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.38%。在H2O2濃度為3.3 mmol/L時(shí),平行測定10次,CV還原峰電流相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為2.6%。所制備的傳感器在4 ℃的冰箱中保存30 d后測定,能保持原來響應(yīng)電流的80%。結(jié)果表明,Hb修飾SiO2球腔微電極陣列具有良好的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性。
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Abstract A silicon dioxide (SiO2) cavities array was fabricated on indium-tin oxide (ITO) electrode surface with the template of the polystyrene(PS) particles array by using sol-gel technique. The morphology of SiO2 cavities array was highly ordered which was obtained by scanning electrode microscope. The results of electrochemistrical study showed that the cyclic voltammetric (CV) curve of SiO2 cavities array was in accordance with that of microelectrodes array. Using hemoglobin (Hb) as model protein, an amperometric biosensor for detection of H2O2 was prepared by adsorbing Hb in SiO2 cavities directly. The properties of direct electrochemistry and electrocatalysis of Hb were studied by CV method. The response of the biosensor for H2O2 was fast. A linear relationship between current response and the concentration of H2O2 ranging from 2.03×10-6 to 1.21×10-2 mol/L was obtained with a detection limit of 5.73×10-7 mol/L. And the apparent Michaelis-Menten constant was 0.266 mmol/L.
Keywords Sol-gel technique; Silicon dioxide cavities; Microelectrode array; Hemoglobin; Biosensor
(Received 18 November 2010; accepted 1 March 2011)