金 實,劉 聰,任劍明,紀紅梅,任 蕾
(1中國醫科大學附屬第四醫院,沈陽110032;2中國醫科大學附屬盛京醫院;3東北制藥集團;4鄭州大學第一附屬醫院)
葡萄糖轉運蛋白4(GLUT4)是一種跨膜轉運蛋白,作為促進葡萄糖轉運的載體,其表達及功能改變可能與骨骼肌、脂肪組織的胰島素抵抗密切相關。2010年5月,我們對GLUT4 mRNA在糖尿病大鼠骨骼肌及脂肪組織中的表達情況進行了觀察,旨在進一步探索2型糖尿病發病的分子機制。
1.1 材料 健康雄性SD大鼠46只,體質量180~220 g(中國醫科大學動物部);鏈脲佐菌素(STZ),RNA 提取液,DL2000DNA Marker,GLUT4及β-actin上下游引物;胰島素放射免疫試劑盒,RT-PCR試劑盒。
1.2 動物分組及處理 將46只SD大鼠隨機分為對照組及高脂組各10只、高血糖組及糖尿病組各13只,各組均自由攝食(常規飼料)、飲水,12 h光照周期,室溫保持18~28℃,1周后禁食12 h,斷尾取血測空腹血糖。其后高脂組和糖尿病組飼喂高脂飲食(于常規飼料中分別以30%、10%、3%加入豬油、白砂糖、雞蛋黃,蛋白質、脂肪、碳水化合物所占比例分別為9.3%、59.1%、31.6%),對照組和高血糖組則繼續飼喂常規飼料,其中高血糖組同時于腹腔內注射STZ 55mg/kg、其余三組腹腔內注射等量檸檬酸緩沖液,72 h后高血糖組斷尾取血,測血糖>16.7 mmol/L、尿糖3+~4+持續3 d視為高血糖造模成功。其后各組同前飼養,6周后各組禁食12 h、稱體質量,糖尿病組腹腔內注射STZ 30mg/kg,其余三組腹腔內注射等量檸檬酸緩沖液,72 h后糖尿病組斷尾、取血,測血糖及尿糖達上述標準視為2型糖尿病造模成功[1]。各組均繼續飼養4周至第10周結束實驗。實驗過程中糖尿病組造模失敗2只、死亡1只,高血糖組造模全部成功、死亡4只。
1.3 空腹血糖(FBG)、空腹胰島素(FINS)等檢測上述實驗結束后,四組均禁食12 h、測體質量,用10%水合氯醛腹腔注射麻醉大鼠,并進行心臟采血,采用拜安捷快速血糖儀檢測FBG,用放射免疫法檢測FINS,按公式ln[1/(FPG×FINS)]計算胰島素敏感指數(ISI);采血結束后斷椎處死動物,快速取大鼠右后肢大腿肌肉組織,附睪周圍脂肪及腎周脂肪,稱脂肪質量后立即將標本置于液氮中,于-80℃保存。
1.4 骨骼肌及脂肪組織中GLUT4 mRNA表達測定①引物設計:GLUT4引物擴增產物片段長度為154 bp,內參照β-actin擴增產物片段長度為690 bp。②RNA提取及反轉錄:取骨骼肌組織、脂肪組織各100mg,應用RNA提取液提取總RNA。逆轉錄反應體系12 μl,條件為65 ℃1min,30 ℃5min,15~30min勻速升溫至65℃,65℃30min,98℃5min,5 ℃5min。③PCR 反應:反應體系25 μl,包括cDNA 3 μl、滅菌蒸餾水17.1 μl,10 × Buffer 2.5 μl,dNTP Mixture 2 μl、Bca-Optimized Taq 0.2 μl、GLUT4或β-actin上下游各0.1 μl。反應條件:94℃預變性3min,94℃變性40 s(β-actin為30 s),55.9 ℃退火1min,72 ℃延伸1min(β-actin為5min),擴增35個循環。72℃延伸7min。④反應產物檢測與分析:PCR產物在1.5%瓊脂糖凝膠上電泳,取PCR產物5 μl電泳30min,將凝膠放入G:Box Sygene PCR分析儀中拍照記錄結果,用激光密度掃描儀記錄GLUT4和β-actin電泳帶密度進行分析。
1.5 統計學方法 應用SPSS11.5軟件進行統計學處理,計量數據以±s表示,非正態分布數據經對數轉換后進行分析,組間比較采用方差分析,檢驗水準α=0.05。
2.1 FBG、FINS及 ISI 10周后四組FBG、FINS及ISI見表1。
表1 四組FBG、FINS及 ISI比較(±s)

表1 四組FBG、FINS及 ISI比較(±s)
注:與對照組比較,*P<0.01
ISI糖尿病組 10 9.39±1.86* 17.16±1.95* -5.08±0.12組別 n FBG(mmol/L) FINS(IU/L)*高脂組 10 5.95±0.81 24.92±1.13* -4.99±0.17*高血糖組 9 24.01±6.49* 3.01±1.34 -4.13±0.44照組10 5.02±0.67 7.66±0.75 -3.64±0.22對
2.2 骨骼肌和脂肪組織中GLUT4 mRNA表達 10周后四組骨骼肌和脂肪組織中GLUT4 mRNA表達見表2。
表2 四組GLUT4 mRNA表達比較(±s)

表2 四組GLUT4 mRNA表達比較(±s)
注:與對照組比較,*P<0.01;與脂肪組織比較,△P<0.01
骨骼肌 脂肪糖尿病組 10 1.62±0.33*△0.84±0.14組別 n*1.40±0.24高脂組 10 1.70±0.25*△0.93±0.21*高血糖組 9 1.40±0.49*△0.71±0.15*對照組 10 2.61±0.60△
葡萄糖是機體能量的主要來源,而GLUT4為最主要的葡萄糖運載體[2],存在于胰島素敏感的骨骼肌、心肌、脂肪等細胞中。無胰島素刺激時GLUT4主要位于細胞儲存囊泡內;胰島素與受體結合后,可通過多種蛋白質與蛋白質間的相互作用[3]調控GLUT4轉運,此使胰島素敏感組織可迅速對循環胰島素水平作出反應、保持血糖平衡[4,5],而GLUT4合成、分泌以及轉位等異常均可能導致2型糖尿病。胰島素抵抗是2型糖尿病重要發病機制之一。Carvalho等發現,在dB/dB小鼠模型中,過量表達GLUT4可改善糖尿病病情,而GLUT4遺傳缺陷者則表現為胰島素抵抗。目前研究認為,胰島素抵抗與組織中GLUT4內在活性降低、再分布(特別是胰島素刺激后細胞內膜向細胞膜轉位減少)、基因轉錄受抑導致GLUT4 mRNA和蛋白含量減少有關[4]。
本研究顯示,與對照組比較糖尿病組 FBG、FINS及ISI顯著升高、骨骼肌及脂肪組織中GLUT4 mRNA表達均明顯下調;高血糖組、高脂組骨骼肌和脂肪組織GLUT4 mRNA表達亦顯著低于對照組。進一步證實GLUT4 mRNA表達下降所致骨骼肌、脂肪組織對葡萄糖攝取利用減少是胰島素抵抗的重要分子基礎,是誘發2型糖尿病的原因之一;高脂和高血糖可能均為引起GLUT4 mRNA表達改變的主要因素。本研究還顯示,GLUT4 mRNA在骨骼肌中的表達顯著高于脂肪組織,與以往研究基本一致。文獻報道,高脂飲食可下調白色脂肪組織中GLUT4水平,并明顯減弱有胰島素刺激脂肪細胞的GLUT4轉位及葡萄糖攝取,此作用隨飲食中n-3多不飽和脂肪酸的增加而減弱;脂肪細胞GLUT4表達水平下降還可誘導肌肉、肝臟等組織的胰島素抵抗[6];高血糖、高胰島素血癥可引起GLUT4基因轉錄功能障礙、GLUT4蛋白合成減少,導致肌細胞攝取和利用葡萄糖的能力下降[7]。
綜上所述,GLUT4 mRNA在骨骼肌中的表達高于脂肪組織;高脂、高血糖可通過下調GLUT4 mRNA表達加重胰島素抵抗,進而誘發2型糖尿病。
[1]司曉晨,尚文賓,卞慧敏,等.鏈脲佐菌素加高脂飲食誘導2型糖尿病大鼠模型[J].安徽中醫臨床雜志,2003,15(5):383-385.
[2]遲鋮,金苗苗,母義明,等.糖尿病大鼠模型建立及其脂肪組織PPARγ和GLUT4表達的改變[J].軍醫進修學院學報,2008,29(3):220-222.
[3]James DE.MUNC-ing around with insulin action[J].J Clin invest,2005,155(2):219-221.
[4]Watson RT,Pessin J.Intracellular organization of insulin signaling and GLUT4 translocation[J].Recent Prog Horm Res,2001,56(2):175-193.
[5]Mohammad A,Sharma V,Mcneill JH.Vanadium increases GLUT4 in diabetic rat skeletal muscle[J].Mol Cell Biochem,2002,233(1):139-143.
[6]Abel ED,Peroni O,Kim JK,et al.Adipose-selective targeting of the GLUT4 gene impairs insulin action in muscle and liver[J].Nature,2001,409(6821):729-733.
[7]Chan P,Wong KL,Lin IM,et al.Antihyperglycemic action of angiotensin Ⅱ receptor antagonist valsartan,in streptozot-ocin-induced diabetic rats[J].Hypertension,2003,21(4):761-769.