夏 武, 楊宇平, 陳永鳳, 程 娜, 劉巨源△
(新鄉醫學院1藥學院藥理學教研室,2 第三附屬醫院呼吸內科,河南 新鄉453003)
肺間質纖維化(pulmonary fibrosis,PF)是嚴重威 脅人類健康的疾病,迄今沒有滿意的治療方法[1]。PF 過程中成纖維細胞(fibroblast,FB)大量增殖并轉化為肌成纖維細胞(myofibroblast,MB),MB 能分泌細胞外基質(extracellular matrix,ECM),ECM 占據肺泡腔并導致肺結構不可逆重構,造成呼吸衰竭[2]。Ⅲ型膠原(collagen Ⅲ)是ECM 成分之一,在PF 時表達顯著增高。信號轉導子和轉錄激活子3(signal transducer and activator of transcription 3,STAT3)可被多種細胞因子和生長因子激活,活化的STAT3 進入核內調控基因轉錄,調節機體多種生理和病理過程?;罨疭TAT 蛋白抑制劑(protein inhibitor of activated STAT3,PIAS3)能特異性抑制STAT3 蛋白活性,阻斷STAT3 與靶基因結合。STAT3 在纖維化疾病中的作用還不清楚,有研究發現STAT3 對肝臟、皮膚和腎臟的纖維化形成有調節作用。全反式維甲酸(all-trans-retinoic acid,ATRA)作用廣泛多樣,已有研究證實ATRA 具有抗纖維化作用,ATRA 能否通過影響STAT3 和PIAS3 的表達來改善PF 未見報道。因此本研究采用轉化生長因子β1(transforming growth factor beta 1,TGF-β1)誘導FB 向MB 轉化制作肺纖維化體外細胞模型并給予ATRA 干預,應用RT-PCR 和Western blotting 方法觀察ATRA 對TGF-β1誘導的HFL-I 細胞中collagen Ⅲ、STAT3和PIAS3 表達的影響,探討ATRA 改善肺纖維化的機制。
人胚肺成纖維HFL-I 細胞購自中國科學院上海生命科學研究院細胞資源中心;ATRA 購于Sigma,DMSO 溶解,現配現用;TGF-β1購于Peprotech,10 mmol·L-1HCl 溶解,現配現用;RT-PCR試劑盒購于寶生物(大連)有限公司;單克隆小鼠抗β-actin、STAT3 抗體和多克隆兔抗p-STAT3 抗體購于Santa Cruz;羊抗小鼠、羊抗兔-HRP 購自武漢博士德公司;PCR 擴增儀為ABI 產品;電泳儀、轉膜儀為北京六一儀器廠產品;凝膠成像系統為上海領成生物科技有限公司產品;酶標儀為Thermo 產品。
2.1 細胞培養與處理 HFL-I 細胞株采用含15%胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)、青霉素(100 kU·L-1)、鏈霉素(100 mg·L-1)的α-MEM 培養液,并于37 ℃、5%CO2的培養箱中培養至對數生長期。所有實驗均采用5 ~7 代細胞。5 μg·L-1TGF-β1刺激0 h、6 h、12 h、24 h、48 h 和72 h 后,RT-PCR法檢測collagen Ⅲ、STAT3 和PIAS3 mRNA 表達,刺激0 d、1 d、3 d 和5 d 后,Western blotting 法檢測STAT3 和pSTAT3 表達。維甲酸干預實驗分為6 組:正常對照組;5 μg·L-1TGF-β1組;10 μmol·L-1ATRA 組;5 μg·L-1TGF-β1+ 0.1 μmol·L-1ATRA 組;5 μg·L-1TGF-β1+ 1 μmol·L-1ATRA組;5 μg·L-1TGF-β1+ 10 μmol·L-1ATRA 組。TGF-β1與ATRA 同時加入。24 h 后,RT-PCR 法檢測各組細胞中collagen Ⅲ、STAT3 和PIAS3 mRNA表達;3 d 后,Western blotting 法檢測STAT3 和pSTAT3 蛋白表達。
2.2 RT-PCR 檢測collagen Ⅲ、STAT3 和PIAS3 mRNA 表達 Trizol 法提取細胞總RNA 并定量。取總RNA 2 μg 進行逆轉錄反應,各取2 μL 產物進行PCR反應擴增GAPDH、collagen Ⅲ、STAT3 和PIAS3。PCR擴增條件為:95 ℃5 min 預變性;95 ℃30 s,退火30 s,72 ℃1 min,30 個循環;72 ℃10 min。反應后各取2 μL PCR 產物進行1.5%瓊脂糖凝膠電泳,以目的片段與內參照GAPDH 比值進行半定量分析,每組實驗重復3 次。引物序列、退火溫度和產物大小見表1。

表1 PCR 引物序列、退火溫度和產物大小Table 1. Primers and PCR reaction conditions
2.3 Western blotting 檢測STAT3 和p-STAT3 蛋白表達 細胞總蛋白提取方法如下:加入細胞裂解液,冰上裂解30 min,4 ℃12 000 r·min-1離心5 min,取上清。Bradford 法測定蛋白濃度。計算含20 μg總蛋白的溶液體積作為上樣量,進行SDS-PAGE 電泳,轉移至PVDF 膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h。STAT3 和p-STAT3Ⅰ抗室溫孵育2 h 后4 ℃過夜,HRP 標記的Ⅱ抗室溫孵育1 h 后,加顯色液發光,顯影定影。將膠片掃描后用Quantity One 圖像分析軟件進行各條帶的灰度值測定。以目的條帶與內參照β-actin 的比值作為半定量依據,每組實驗重復3 次。
從圖1 中可看出,與正常對照組相比,HFL-Ⅰ細胞經5 μg·L-1TGF-β1誘導后,collagen ⅢmRNA 12 h、24 h 和48 h 均明顯上調(P <0.05),24 h達到峰值;STAT3 mRNA 各時點均明顯上調(P <0.05),24 h 達到峰值;PIAS3 mRNA 12 h、24 h、48 h 和72 h 均明顯下調(P <0.05),48 h 達到峰谷,72 h 部分回升。從圖2 中可知,與正常對照組相比,TGF-β1誘導HFL-I 細胞經24 h 后,collagen Ⅲ、PIAS3 和STAT3mRNA 表達均與圖1 一致;經10 μmol·L-1ATRA 作用24 h 后,collagen Ⅲ、PIAS3 和STAT3 mRNA表達差異無統計學意義。與TGF-β1誘導組相比,不同濃度ATRA(0.1、1 和10 μmol·L-1)均可下調誘導細胞中collagen Ⅲ和STAT3 mRNA 的表達(P <0.05),上調PIAS3 mRNA 的表達(P <0.05)。
如圖3 所示,與正常對照組相比,HFL-Ⅰ細胞經5 μg·L-1TGF-β1誘導1 d、3 d 和5 d 后,STAT3和p-STAT3 蛋白表達明顯上調(P <0.05)。由圖4可知,與正常對照組相比,TGF-β1誘導HFL-Ⅰ細胞3 d 后,STAT3 和p-STAT3 蛋白表達明顯上調(P<0.05),經10 μmol·L-1ATRA 作用3 d 后,STAT3蛋白表達差異無統計學意義,p-STAT3 蛋白表達稍有 上調(P <0.05)。與TGF-β1組相比,不同濃度ATRA(0.1、1 和10 μmol·L-1)均可下調TGF-β1誘導的STAT3 和p-STAT3 蛋白的表達(P <0.05)。

Figure 1. The expression of collagen Ⅲ,STAT3 and PIAS3 mRNA in TGF-β1-stimulated HFL-I cells detected by RT-PCR. ±s.n=3. * P <0.05 vs 0 h.圖1 RT-PCR 檢測TGF-β1 誘導的HFL-I 細胞collagen Ⅲ、STAT3 和PIAS3 mRNA 的表達

Figure 2. Relative expression of collagen Ⅲ,STAT3 and PIAS3 mRNA in the TGF-β1-stimulated HFL-I cells treated with ATRA. Lane 1:10 μmol·L -1 ATRA;Lane 2:TGF-β1 + 0.1 μmol·L -1 ATRA;Lane 3:TGF-β1 + 1 μmol·L -1 ATRA;Lane 4:TGF-β1 + 10 μmol·L -1 ATRA;Lane 5:TGF-β1;Lane 6:control. ±s.n =3. * P <0.05 vs control group;△P <0.05 vs TGF-β1 group.圖2 RT-PCR 檢測ATRA 對TGF-β1 誘導的HFL-I collagen Ⅲ、STAT3 和PIAS3 mRNA 表達的影響
大多數PF 都有共同的病理過程,初期表現為肺泡炎,炎癥和異常修復導致肺間質細胞增殖,產生大量的細胞外基質,導致肺組織的正常結構被囊性空腔所替代,使得肺泡氣體- 交換單元持久性喪失。PF 時肺結締組織中存在大量纖維化灶,其中含大量MB,MB 是產生ECM 的主要細胞,也與ECM 沉積相關。PF 時還有大量細胞因子和生長因子活化,包括TGF-β1、表皮細胞生長因子(epidermal growth factor,EGF)、結締組織生長因子(conneetive tissue growth factor,CTGF)、血小板衍生生長因子(platelet derived growth factor,PDGF)和白細胞介素-6(interleukin-6,IL-6)等,這些細胞因子和生長因子都具有促纖維化作用[3-4]。TGF-β1是至關重要的纖維化因子,TGF-β1可以誘導肺間質FB 發生表型轉化變成MB。Vancheri 等[5]在體外實驗證實了TGF-β1可誘導肺成纖維細胞向肌成纖維細胞的分化。
本實驗組前期工作顯示5 μg·L-1TGF-β1可以使HFL-I 細胞α-平滑肌肌動蛋白表達明顯增加[6],α-平滑肌肌動蛋白是MB 的標志性蛋白[7],表明FB 部分向MB 轉化,而且慢性纖維化疾病患者血清中的TGF-β1濃度接近5 μg·L-1[8],所以本實驗用5 μg·L-1TGF-β1誘導HFL-I 細胞向MB轉化,制造體外PF 模型。

Figure 3. Relative expression of STAT3 and p-STAT3 proteins in TGF-β1-stimulated HFL-I cells detected by Western blotting.±s.n=3. * P <0.05 vs 0 d.圖3 Western boltting 檢測TGF-β1 誘導的HFL-I 細胞STAT3 和p-STAT3 蛋白的表達

Figure 4. Relative expression of STAT3 and p-STAT3 proteins in the TGF-β1-stimulated HFL-I cells treated with ATRA.Lane 1:control;Lane 2:TGF-β1;Lane 3:10 μmol·L -1 ATRA;Lane 4:TGF-β1 + 0.1 μmol·L -1 ATRA;Lane 5:TGF-β1 + 1 μmol·L -1 ATRA;Lane 6:TGF-β1 + 10 μmol·L -1 ATRA. ±s.n=3. * P <0.05 vs control group;△P <0.05 ATRA vs TGF-β1 group.圖4 Western boltting 檢測ATRA 對TGF-β1 誘導的HFL-I STAT3 和p-STAT3 蛋白表達的影響
在PF 時,MB 持續增殖,單個細胞的生存時間大大延長,包括collagen Ⅲ在內的ECM 成分含量顯著增加[9]。有研究提示,collagen Ⅲ可作為判定間質纖維化早期或活動期的較好指標[10]。本實驗研究表明TGF-β1誘導HFL-Ⅰ細胞12 h、24 h 和48 h 后collagen ⅢmRNA 表達較正常對照組相比均明顯上調(P <0.05)。膠原表達增加可代替肺泡結構,使肺泡壁變形和破壞,加速PF 形成。
STAT3 可以被不同的細胞因子受體激活,細胞因子與受體結合后磷酸化STAT3 蛋白,磷酸化STAT3 蛋白形成同源或異源二聚體進入核內激活特異性基因表達。PIAS3 是STAT3 的特異性抑制子,PIAS3 可以通過與二聚化的STAT3 結合、掩蓋STAT3 的DNA 結合區或與STAT3 單體結合阻礙其二聚化而阻斷STAT3 的信號轉導作用[11]。Pang等[12]研究發現STAT3 的抑制劑S3I-201 可以抑制腎纖維化時α-平滑肌肌動蛋白和纖連蛋白的表達。本研究表明TGF-β1誘導人胚肺成纖維細胞HFL-I 后,STAT3 mRNA 和蛋白表達明顯升高,磷酸化STAT3 蛋白也顯著增加,而PIAS3 mRNA 表達則明顯下調,結果都使核內活性STAT3 增加。STAT3 靶基因的表達產物如Bcl-2、生存素、血管內皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)等有促進細胞生存、拮抗細胞凋亡的作用,在PF 的病程發展中有重要作用[13]?;钚許TAT3 增加,使得Bcl-2、生存素、VEGF 等表達增加,加速PF病程。
ATRA 是維生素A 在生物體內的重要活性形式,其作用復雜多樣,能促進免疫細胞增殖,影響骨的生長和上皮代謝,誘導腫瘤細胞分化等。機體內一定濃度的ATRA 可調節細胞的增殖、分化、成熟,是機體正常生長發育和各種生理活動必不可少的重要因子。在體內體外的實驗中都發現ATRA 有抗肺纖維化活性。ATRA 可以抑制肺纖維化大鼠前膠原α1mRNA 表達和膠原蛋白合成[14]。Tabata 等[15]研究表明,ATRA 可以減輕輻射和博來霉素所致小鼠肺組織纖維化,降低TGF-β1、IL-6 和膠原蛋白的表達而起抗纖維化作用。本實驗結果顯示,ATRA 呈濃度依賴地降低TGF-β1誘導的HFL-I 細胞中collagen ⅢmRNA 表達(P <0.05),使膠原的合成減少而起抗纖維化作用。進一步研究發現,各濃度的ATRA都降低TGF-β1誘導的HFL-I 細胞中STAT3 mRNA 和蛋白表達及磷酸化STAT3 水平,上調PIAS3 mRNA 表達。這表明ATRA 抗纖維化作用與STAT3和PIAS3 有關,ATRA 可通過抑制STAT3 和p-STAT3 使肺纖維化相關基因活化減少來改善PF,具體調控過程與調控基因有待進一步研究。
[1] Gharaee-Kermani M,Gyetko MR,Hu B,et al. New insights into the pathogenesis and treatment of idiopathic pulmonary fibrosis:a potential role for stem cells in the lung parenchyma and implications for therapy[J]. Pharm Res,2007,24(5):819-841.
[2] Vancheri C,Failla M,Crimi N,et al. Idiopathic pulmonary fibrosis:a disease with similarities and links to cancer biology[J]. Eur Respir J,2010,35(3):496-504.
[3] Aluwihare P,Munger JS. What the lung has taught us about latent TGF-β activation[J]. Am J Respir Cell Mol Biol,2008,39(5):499-502.
[4] Corvol H,Flamein F,Epaud R,et al. Lung alveolar epithelium and interstitial lung disease[J]. Int J Biochem Cell Biol,2009,41(8-9):1643-1651.
[5] Vancheri C,Gili E,Failla M,et al. Bradykin in differentiates human lung fibroblasts to a myofibroblast phenotype via the B2 receptor[J]. J Allergy Clin Immunol,2005,116(6):1242-1248.
[6] 李佳鑫,海廣范,賈巖龍,等. ATRA 對人胚肺成纖維細胞增殖及α-SMA 表達的影響[J]. 中國病理生理雜志,2011,27(4):787-790.
[7] Guo W,Shan B,Klingsberg RC,et al. Abrogation of TGF-β1-induced fibroblast-myofibroblast differentiation by histone deacetylase inhibition[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol,2009,297(5):L864-L870.
[8] Bartram U,Speer CP. The role of transforming growth factor beta in lung development and disease[J]. Chest,2004,125(2):754-765.
[9] Phan SH. The myofibroblast in pulmonary fibrosis[J].Chest,2002,122(6):286-289.
[10] Lai CK,Wallace WD,Fishbein MC. Histopathology of pulmonary fibrotic disorders[J]. Semin Respir Crit Care Med,2006,27(6):613-622.
[11] Ke S. Regulation of cytokine signaling pathways by PIAS proteins[J]. Cell Res,2006,16(2):196-202.
[12] Pang M,Ma L,Gong R,et al. A novel STAT3 inhibitor,S3I-201,attenuates renal interstitial fibroblast activation and interstitial fibrosis in obstructive nephropathy[J].Kidney Int,2010,78(3):257-268.
[13] Bromberg J,Wang TC. Inflammation and cancer:IL-6 and STAT3 complete the link[J]. Cancer Cell,2009,15(2):79-80.
[14] 王海斌,何 冰,陳 建,等. 維甲酸對肺纖維化大鼠肺成纖維細胞膠原表達的調控機制[J]. 中國藥理學通報,2000,16(1):168-171.
[15] Tabata C,Kadokawa Y,Tabata R,et al. All-trans-retinoic acid prevents radiation- or bleomycin-induced pulmonary fibrosis[J].Am J Respir Crit Care Med,2006,174(12):1352-1360.