于永江,李樹民,鮑文華,梁建合,閻紅娥,孫云暉
(佳木斯大學附屬第一醫院 呼吸內科,黑龍江 佳木斯154002)
肺纖維化是一種復雜的進行性病變,致病因素多、步驟復雜,基本上是不可逆的病理改變[1,2]。目前治療方法有限,預后差,死亡率高,被稱為不是腫瘤的腫瘤。病因及發病機制尚不清楚,國外學者研究提示,多種炎癥因子可能參與了肺纖維化的發生、發展[3]。最近發現的一種新的效應性CD4+T細胞亞群Th17細胞,以分泌IL-17為特征性細胞因子,還可分泌IL-21、IL-22和IL-26等多種細胞因子,在防御細菌的胞外感染、介導慢性炎癥和自身免疫性疾病、腫瘤等過程中發揮重要作用[4,5]。IL-21對 T細胞、B細胞、NK細胞和DC等免疫細胞發揮作用,參與機體的獲得免疫與天然免疫[6]。我們前期工作發現Th17細胞及IL-17參與肺纖維化動物模型的發病過程。本次實驗檢測博來霉素致大鼠肺纖維化模型不同發病階段肺組織中Th17細胞、IL-21因子表達水平,探討在其發病過程中的作用及機制。
1.1 材料
1.1.1 實驗動物 健康SPF級SD大鼠64只,雌雄各半,體質量(210±20)g,3-4月齡,由大連醫科大學動物部提供,許可證號:動物合格證號ISCXK(遼)2008-0002分籠飼養于SPF級環境中。
1.1.2 試劑和儀器 注射用鹽酸BLM,15mg/支,日本化藥株式會社生產 ;HYP試劑盒購于天津市金圣生物試劑公司;IL-21的引物由上海生物工程有限公司合成,如下所示:beta-actin(784bp):上游5′-AAGAGAGGCATCCTGACCCT-3′,下 游 5′-GAGCCAGGGCAGTAATCTCC-3′;IL-21 (142 bp)上游 5′-CCTCAGCTGTGCCAACAAGTC-3′,下 游 5′-TCCTGAACTTCTAACAGCTCCACA-3′;大鼠抗小鼠單克隆流式抗體 APC Mouse Anti-Rat CD3、PerCP Mouse Anti-Rat CD8a、抗大鼠/小鼠單克隆抗體 Anti-Mouse/Rat IL-17AFITC 及同型對照、固定/破膜劑、Lysing Buffer溶血素(美國BD Pharmingen公司)均購于北京利文公司;膠原酶ⅤCollagenaseⅤ、離子霉素、PMA(美國Sigma公司)均購于北京利文公司。
1.2 方法
實驗分組與造模:采用隨機數字法將64只SD大鼠均分為N、P、D 3組。P、D組均采用一次性氣管內注射博來霉素(5mg/kg)方法建立大鼠肺纖維化模型。對照組氣管內灌注等量0.9%氯化鈉注射液。D組從第7天開始每日腹腔注射地塞米松注射液(3mg/kg),N、P組腹腔注射0.9%氯化鈉注射液。
1.2.1 標本取材 分別于造模第7、14、28天每組隨機取8只大鼠處死,留取左肺分為兩份,一份通過蘇木精-伊紅染色(HE)觀察肺組織病理變化和 另一份取20mg肺組織 檢測其HYP含量,取右肺組織,留取80mg肺組織采用膠原酶Ⅴ消化法制備肺組織單細胞懸液,采用流式細胞技術檢測Th17細胞百分比。另取右肺組織100mg,放入-196℃液氮中保存,用于RT-PCR評估IL-21mRNA的表達水平。
1.2.2 采用堿水解法測定肺組織HYP含量 嚴格按照試劑盒說明書進行。
1.2.3 流式細胞分析法檢測肺組織中Th17 ①采用膠原酶Ⅴ消化法制備濃度1.0-3.0×107個/L肺單細胞懸液。②刺激培養淋巴細胞:加:PMA(50 μg/ml)、離子霉素Ionomycin(lug/ml),BFA(1μg/ml);(37℃、5%CO2、孵育5h)③收獲細胞,細胞膜表面染色:用抗鼠CD3+、CD8+抗體60μl/份樣本、染色,室溫避光15min;加入2ml PBS洗滌離心去上清。④破膜通透:加入0.25ml破膜劑混勻10 min后終止破模;加PBS0.5ml上機觀察CD3+CD8-細胞數;如果數量較為理想,取4萬細胞做陰性對照,離心去上清。⑤加PE標記的抗人IL-17,室溫避光孵育30min,洗滌后上機;⑥根據前向散射光和側向散射光以淋巴細胞群設門,設置各通道之間的熒光補償后,對Thl7細胞的比例進行檢測。
1.2.4 RT-PCR肺組織IL-21mRNA 的表達 提取肺組織總RNA,反轉錄為cDNA。目的基因IL-21mRNA 的 上 游 引 物:5′-CCTCAGCTGTGCCAACAAGTC-3′,下 游 引 物 5′-TCCTGAACTTCTAACAGCTCCACA-3′擴增片段142bp;內參照 B-Actin mRNA 上 游 引 物:5′-AAGAGAGGCATCCTGACCCT-3′,下 游 引 物 5′-GAGCCAGGGCAGTAATCTCC-3′,產 物 長 度 784bp。PCR反應條件按試劑說明進行。凝膠成像系統,Total Lab圖像分析系統測定各組IL-21mRNA反轉錄擴增條帶的積分吸光度值。
1.2.5 統計學方法 采用SPSS19.0統計軟件進行分析。實驗結果以均數±標準差(ˉx±s)表示。多組均數比較采用單因素方差分析,組間多重比較采用LSD-t檢驗,檢驗水準α=0.05,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 大鼠的組織病理學改變及羥脯氨酸含量變化
2.1.1 HE染色 N組病理切片顯示大鼠肺組織結構無異常,間質未發現膠原沉積。造模第7d,P組大鼠肺組織顯示明顯的肺泡炎,有大量炎性細胞滲出肺泡腔,有少量膠原沉積于肺間質;模型組第14d,P組肺泡炎減輕,成纖維細胞增生、膠原沉積、肺泡間隔增寬,肺泡腔縮小。模型組第28d,P組肺纖維化形成穩定,有部分炎癥細胞浸潤。D組也出現從肺泡炎到肺纖維化的變化過程,但變化程度同一時間點較P組輕(P<0.05),見圖1。
2.1.2 大鼠肺組織中羥脯氨酸含量變化 N組大鼠肺組織中羥脯氨酸含量隨時間變化無改變。P組和D組大鼠肺組織內羥脯氨酸含量隨時間延長逐漸增加。P、D組羥脯氨酸含量均高于N組(P<0.05),相同時間點,D組羥脯氨酸含量低于P組(P<0.05),見表1。

圖1 大鼠肺組織病理學改變

表1 大鼠肺組織羥脯氨酸含量(ˉx±s,mg/g)
2.2 大鼠肺組織中Th17細胞的比例
N組大鼠肺組織中Th17的比例隨時間變化無改變。P組大鼠肺組織內Th17的比例在第7天最高,此后逐漸下降。P、D組Th17的比例均高于N組(P<0.05),D組Th17的比例低于P組,見表2。

表2 大鼠肺組織中的CD3+CD8-IL-17+Th17細胞百分率 (%)
2.3 大鼠肺組織中IL-21mRNA的表達
N組大鼠肺組織中IL-21的表達水平隨時間變化無改變。P組大鼠肺組織中lL-21的表達水平在第7天最高,此后逐漸下降。P、D組IL-21的表達水平均高于 N組(P<0.05),D組IL-21的表達水平低于P組(P<0.05),見表3、圖2。

表3 大鼠肺組織中IL-21的表達水平

圖2 大鼠肺組織中IL-21的表達水平
本研究制造大鼠肺纖維化模型,采用當前在國際上廣泛采用氣管內注入BLM的實驗方法[7],因HYP含量能反映膠原代謝情況,故測定組織中HYP含量,可以判斷纖維化程度[8]。本次研究結果發現:肺組織病變早期表現以肺泡的炎癥反應為主,晚期表現以纖維化組織增生和細胞外基質沉積為主;實驗模型組及藥物干預組大鼠肺組織HYP含量的結果隨時間逐漸升高,結果與文獻[9,10]報道一致,提示本實驗動物模型制備均成功。
為探討Th17細胞及IL-21在肺纖維化中的表達及其意義,實驗采用流式細胞術檢測Th17細胞比率及RT-PCR半定量檢測IL-21在博來霉素致大鼠肺纖維化模型中的動態表達。結果發現,P組肺組織中Th17細胞比率及IL-21的表達水平均高于N組(P<0.05),尤其在第7天肺泡炎階段Th17細胞及IL-21水平達高峰。P組肺組織中Th17細胞的比率高于N組與文獻報道[11]相一致,但高峰提前。提示Th17細胞及IL-21可能與肺纖維化形成過程中的炎癥損傷及纖維化形成關系密切。其可能機制:Th17細胞通過其分泌的IL-17來發揮強致炎作用[12]。IL-21形成自分泌環,誘導 Th17細胞分泌IL-21,IL-21促進CD4+T分化為 Th17細胞[13]。IL-21直接激活NK細胞,經過JAK-STAT3信號通路,促進其細胞增殖和分化,從而發揮殺傷感染病毒細胞的作用,激活的NK細胞分泌細胞因子,細胞因子又能激活NK細胞,使其功能進一步增強,形成正反饋,同時單核-巨噬細胞被激活,其殺傷和吞噬病原菌的作用是通過ROIS和iNOS實現,因分泌大量細胞因子致炎癥細胞聚集在感染部位,使炎癥反應加強[14]。IL-21表達減少的小鼠,肺部炎癥及纖維化減輕,表明IL-21促進肺部炎癥和纖維化[15]。
本研究發現在應用糖皮質激素的D組,Th17細胞及IL-21水平的表達水平及變化趨勢與P組相同,表達水平明顯下降。可能的作用機制:糖皮質激素是一種強效免疫抑制劑,可以抑制多種細胞因子的合成與分泌[16],降低免疫復合物水平和阻止多種有免疫效應的細胞功能,從而減少IPF的肺泡炎癥和纖維化[17]。本研究提示:糖皮質激素可能通過抑制IL-21因子的表達從而減少Th17細胞的分泌的細胞因子,從而減輕炎癥反應,抑制肺纖維化的進展。
本實驗在動物水平研究關于Th17細胞及IL-21在肺纖維化中的作用和機制。實驗動物與人類的發病機制基本相同但是還存在差異,應進一步行臨床實驗研究,為肺纖維化的治療提供理論依據。
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