秦曉華,陳艷霞,涂衛平,黃 翀,房向東,鄒宏昌,徐承云
(南昌大學第二附屬醫院腎內科 330006)
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全反式維甲酸對高糖環境下HK-2細胞轉分化的影響及其可能機制
秦曉華,陳艷霞,涂衛平△,黃翀,房向東,鄒宏昌,徐承云
(南昌大學第二附屬醫院腎內科330006)
目的探討全反式維甲酸(ATRA)對高糖環境下正常人腎小管上皮HK-2細胞株轉分化的影響及其可能機制。方法將體外培養的HK-2 細胞按隨機數字表法分為以下7組:空白組、高糖組、高滲組、高糖+低濃度ATRA組、高糖+中濃度ATRA組、高糖+高濃度ATRA組、Rho激酶抑制劑Y27632干預組。采用實時熒光定量聚合酶鏈反應(RT-PCR)檢測各組細胞 RhoA及ROCK1 mRNA表達水平,采用細胞免疫熒光檢測高糖環境下HK-2細胞α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA) 及E-鈣黏蛋白的表達變化。結果RT-PCR結果顯示:空白組與高滲組RhoA及ROCK1 mRNA表達水平比較,差異均無統計學意義(P>0.05);高糖組RhoA及ROCK1 mRNA表達水平較空白組、高滲組高,差異均有統計學意義(P<0.05);予以ATRA或Y27632干預后,RhoA及ROCK1 mRNA表達較高糖組減少,差異均有統計學意義(P<0.05),且呈現ATRA濃度依賴性。相關性分析示,高糖組及各ATRA干預組RhoA mRNA與ROCK1 mRNA表達水平呈正相關(P<0.05)。細胞免疫熒光檢測結果顯示:空白組與高滲組α-SMA及E-鈣黏蛋白表達水平比較,差異均無統計學意義(P>0.05);高糖組α-SMA表達水平較空白組高,E-鈣黏蛋白表達水平較空白組低,差異均有統計學意義(P<0.05);予以ATRA或Y27632干預后,α-SMA表達明顯減少,E-鈣黏蛋白表達明顯增多,差異均有統計學意義(P<0.05)。結論ATRA可部分逆轉高糖環境下HK-2細胞轉分化的過程,其機制可能與抑制RhoA/ROCK信號通路有關。
全反式維甲酸;腎小管上皮細胞;α-平滑肌肌動蛋白;E-鈣黏蛋白;RhoA/Rho激酶信號通路
糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)是糖尿病主要的微血管并發癥之一,其主要特點是蛋白尿并伴有腎小球濾過率下降。全反式維甲酸(all-trans retinoic acid,ATRA)是維生素A的活性代謝產物,在機體中能誘導細胞生長、分化及凋亡,同時其在基因調節方面也起著重要作用[1]。最近研究報道,ATRA由于能減少轉化生長因子-β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)的表達,抑制單核細胞趨化肽1的上調,被認為具有緩解腎損傷,保護腎臟的作用[2]。然而,其具體作用機制仍在探索之中。本試驗以人腎小管上皮細胞(HK-2細胞)為研究對象,探索ATRA對RhoA/Rho激酶(ROCK)信號通路的影響,進一步探索其保護腎臟的可能機制,為臨床治療DN提供新思路。
1.1細胞來源人腎小管上皮細胞株(HK-2細胞株)購自美國模式培養物集存庫(ATCC)。
1.2儀器與試劑ATRA、Rho激酶抑制劑Y27632、D-葡萄糖、甘露醇(美國Sigma公司); DMEM(dulbecco′s modified eagle medium)/F12培養基(美國Hyclone公司);胎牛血清(BSA)、0.25%胰蛋白酶(美國Gibco公司);Trizol、引物(美國Invitrogen公司);實時熒光定量聚合酶鏈反應(RT-PCR)試劑盒(北京全式金公司)。核酸微量蛋白測定儀、PCR擴增儀、凝膠圖像成像系統(美國Bio-Rad公司),DYPC-31DN型電泳儀(北京六一儀器廠),鼠抗人單克隆α-平滑肌肌動蛋白(α-smooth muscleactin,α-SMA)抗體、鼠抗人單克隆E-鈣黏蛋白(epithelial- cadherin,E-cadherin)抗體、異硫氰酸熒光素(FITC)標記抗小鼠IgG(北京中杉金橋公司)。
1.3方法
1.3.1細胞培養及試驗分組HK-2細胞培養條件:含10%胎牛血清的DMEM/F12培養基,37 ℃ 5% CO2培養箱培養。待HK-2細胞在培養瓶中生長至70%~80%融合時進行傳代,傳代后生長至約80%融合后改用無血清DMEM/F12繼續培養24 h。將體外培養的HK-2細胞按隨機數字表法分為以下7組:(1)空白組;(2)高糖組(D-葡萄糖濃度為30 mmol/L);(3)高滲組(甘露醇濃度為24.5 mmol/L);(4)高糖+低濃度ATRA組(ATRA濃度為10-7mol/L)、(5)高糖+中濃度ATRA組(ATRA濃度為10-6mol/L )、(6)高糖+高濃度ATRA組(ATRA濃度為10-5mol/L);(7)Rho激酶抑制劑Y27632干預組(高糖+Y27632,Y27632濃度為30 μmol/L),予以高糖培養30 min后再加入Y27632進行干預。各試驗組細胞干預48 h,試驗重復3 次。
1.3.2RT-PCR檢測收集各組細胞總RNA,檢測RNA完整性后測定RNA濃度。取總RNA 1.5 μg進行逆轉錄反應合成cDNA,取cDNA 2 μL在2×EasyTaq PCR Super Mix的作用下擴增目標基因,總反應體系50 μL。PCR擴增條件: 94 ℃預變性5 min,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸7 min,共35個循環。PCR產物電泳儀內120 V,電泳30 min,凝膠成像系統成像并使用Quantity One軟件進行數據分析。RhoA、ROCK1及β-肌動蛋白(β-actin)引物序列及產物長度,見表1。
1.3.3細胞免疫熒光6孔培養板中的細胞用4%多聚甲醛固定20 min(置于4 ℃冰箱),用0.1% Triton穿孔15 min,5% BSA封閉液室溫封閉30 min后,各孔中滴加鼠抗人單克隆α-SMA 抗體(抗體按1∶200稀釋,5% BSA封閉液配制)或鼠抗人單克隆 E-cadherin抗體4 ℃孵育過夜后取出室溫恢復30 min,加入FITC標記抗小鼠IgG二抗,置37 ℃孵箱孵育30 min,熒光顯微鏡下觀察。每組細胞隨機選取10個視野攝像,熒光圖片用 Image-Pro Plus 6.0軟件分析,每個視野積分吸光度值與測量面積的比值為平均熒光強度(即蛋白相對表達量)。

表1 RhoA、ROCK1及β-actin引物序列和產物長度

2.1各組HK-2細胞RhoA及ROCK1 mRNA表達水平比較空白組與高滲組RhoA及ROCK1 mRNA表達水平比較,差異無統計學意義(P>0.05);高糖組RhoA及ROCK1 mRNA表達水平較空白組、高滲組升高,差異均有統計學意義(P<0.05);予以ATRA或Y27632干預組RhoA及ROCK1 mRNA表達水平較高糖組減少,差異均有統計學意義(P<0.05),且呈現ATRA濃度依賴性。見圖1、表2。

M:蛋白質標記物;1:空白組;2:高糖組;3:高滲組;4:高糖+低濃度ATRA組;5:高糖+中濃度ATRA組;6:高糖+高濃度ATRA組;7:Y27632干預組。
圖1各組HK-2細胞RhoA mRNA及ROCK1mRNA的表達情況
2.2相關性分析Pearson直線相關分析示:高糖組及各ATRA干預組RhoA mRNA與ROCK1 mRNA表達水平呈正相關(P<0.05)。

表2 各組HK-2細胞RhoA mRNA及ROCK1 mRNA表達水平比較

續表2 各組HK-2細胞RhoA mRNA及ROCK1 mRNA表達水平比較
*:P<0.05,與空白組比較;#:P<0.05,與高糖組比較;△:P<0.05,與高糖+低濃度ATRA組比較;▽:P<0.05,與高糖+中濃度ATRA組比較。

表3 RhoA mRNA與ROCK1 mRNA的相關性
2.3各組HK-2細胞α-SMA及E-cadherin表達水平比較細胞免疫熒光檢測結果顯示:空白組與高滲組α-SMA、E-cadherin表達水平比較,差異均無統計學意義(P>0.05);高糖組α-SMA表達水平較空白組高,E-cadherin表達水平較空白組低,差異均有統計學意義(P<0.05);予以ATRA或Y27632干預后,α-SMA表達明顯減少,E-cadherin表達明顯增多,差異均有統計學意義(P<0.05),見表4。

表4 各組HK-2細胞α-SMA及E-cadherin表達水平比較
*:P<0.05,與空白組比較;#:P<0.05,與高糖組比較;△:P<0.05,與高糖+低濃度ATRA組比較;▽:P<0.05,與高糖+中濃度ATRA組比較。
本研究RT-PCR結果顯示,各ATRA或Y27632干預組HK-2細胞RhoA及ROCK1 mRNA表達水平均較高糖組降低,呈現ATRA濃度依賴性。且高糖組及各ATRA干預組RhoA與ROCK1 mRNA表達水平呈正相關。這表明高糖可通過RhoA/ROCK信號通路誘導HK-2細胞損傷,而ATRA通過抑制RhoA/ROCK信號通路能緩解由高糖引起的腎損傷。細胞免疫熒光結果顯示,高糖組α-SMA表達水平較空白組明顯升高,E-cadherin表達水平較空白組明顯降低,予以ATRA或Y27632干預后,α-SMA表達明顯減少,E-cadherin表達明顯增多。免疫熒光結果提示,ATRA可通過促進HK-2細胞E-cadherin表達及減少α-SMA表達保護腎臟。
ATRA是維生素A的代謝產物,其通過調節細胞因子的產生參與機體免疫和炎性反應。最近研究表明,ATRA通過上調LIM同源盒轉錄因子1-β(LIM homeobox transcription factor 1-beta,LMX1B)的表達,下調TGF-β1、Ⅳ型膠原蛋白和纖維蛋白的表達,參與因缺氧(復氧)引起的腎小管上皮細胞損傷的修復[3]。Wan等[4]通過將ATRA作用于腎臟細胞后也發現,ATRA通過抑制核因子κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB)信號通路與結締組織生長因子(connective tissue growth factor,CTGF)的表達,可減少因缺氧導致的腎損傷[4]。Molina-Jijón等[2]在糖尿病腎病(DN)動物模型中觀察到,DN腎臟中常伴有ATRA代謝調節紊亂,提示ATRA的改變可能是糖尿病腎病發病起因的新特點。進一步研究顯示,ATRA通過減弱氧化應激與防止腎臟緊密連接蛋白的丟失參與腎臟的保護[2]。然而,糖化清蛋白(glycated albumin,GA)在人系膜細胞中能呈劑量依賴性地增加細胞內的氧化應激及COX-2和VCAM-1分子的表達,ATRA在人系膜細胞中能將GA的這種作用放大3~4倍,被認為是DN新的病理生理特點[5]。
RhoA/ROCK信號通路是DN導致腎臟纖維化的重要通路之一,其可通過影響轉化生長因子-β(transforming growth factor-β,TGF-β)、血管緊張素Ⅱ、NF-κB的分泌,激活并增強其信號通路,介導腎臟纖維化[6]。國內外關于ATRA能否通過RhoA/ROCK信號通路對腎臟細胞產生影響的文獻報道較少。本研究證實,ATRA可通過抑制RhoA/ROCK信號通路促進E-cadherin表達及減少α-SMA表達,緩解因高糖引起的HK-2轉分化,參與腎臟保護,抑制腎臟纖維化。
[1]Zhou TB,Qin YH,Ou C,et al.All-trans retinoic acid can regulate the expressions of gelatinases and apolipoprotein E in glomerulosclerosis rats[J].Vascul Pharmacol,2011,55(5/6):169-177.
[2]Molina-Jijón E,Rodríguez-Muoz R,Namorado-Mdel C,et al.All-trans retinoic acid prevents oxidative stress-induced loss of renal tight junction proteins in type-1 diabetic model[J].J Nutr Biochem,2015,26(5):441-454.
[3]Zhou TB,Ou C,Jiang ZP,et al.Potential signal pathway between all-trans retinoic acid and LMX1B in hypoxia-induced renal tubular epithelial cell injury[J].J Recept Signal Transduct Res,2016,36(1):53-56.
[4]Wan X,Li X,Bo H,et al.All-trans retinoic acid protects renal tubular epithelial cells against hypoxia induced injury in vitro[J].Transplant Proc,2013,45(2):497-502.
[5]Alique M,Moreno-Manzano V,Sepúlveda-Muoz JC,et al.All-trans retinoic acid and glycated albumin reciprocally influence their effects in human mesangial cells[J].Int J Vitam Nutr Res,2005,75(1):47-53.
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秦曉華(1976-),副主任醫師,碩士,主要從事腎臟病的臨床及基礎研究。△
,E-mail:tuweiping6102@sina.com。
R587.1
B
1671-8348(2016)20-2853-03
2016-01-12
2016-03-15)
·經驗交流·doi:10.3969/j.issn.1671-8348.2016.20.040