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綿茵陳藥材中綠原酸提取工藝優(yōu)化*

2018-03-05 05:45:46江尚飛邱妍川楊宗發(fā)
中國藥業(yè) 2018年4期

伍 彬,江尚飛,邱妍川,楊宗發(fā)

(重慶醫(yī)藥高等專科學(xué)校,重慶 401331)

綿茵陳為菊科多年生草本植物濱蒿 Artemisia scoparia Waldst.et Kit.或茵陳蒿 Artemisia capillaris Thunb.的干燥地上部分,春季幼苗高6~10 cm時(shí)采收,或秋季花蕾長成至花初開時(shí)采割,除去雜質(zhì)和老莖,曬干。春季采收的習(xí)稱為“綿茵陳”,秋季采收的稱為“花茵陳”,習(xí)稱“茵陳蒿”。其藥用歷史悠久,味苦、辛,性微寒,歸脾、胃、肝、膽經(jīng),主治濕熱黃疸、膽囊炎、小便不利、風(fēng)癢瘡疥、濕瘡瘙癢、濕溫初起。目前,從金銀花和杜仲中提取綠原酸的工藝研究較廣泛,技術(shù)較成熟,但隨著金銀花和杜仲市場價(jià)格的攀升,生產(chǎn)成本日趨上升,因此,綠原酸的提取需要新思路[1-5]。本研究中通過正交試驗(yàn)考察了乙醇體積分?jǐn)?shù)、提取溫度、提取時(shí)間、固液比、提取次數(shù)等因素對綿茵陳綠原酸提取率的影響[6-8],并優(yōu)選出綿茵陳中綠原酸的最佳提取工藝。現(xiàn)報(bào)道如下。

1 儀器與試藥

1.1 儀器

SB-120DT型超聲波清洗機(jī)(寧波新芝生物科技股份有限公司);JCE-3K型高精度計(jì)數(shù)桌秤(臺(tái)灣鈺恒股份有限公司);PC4010型高效液相色譜儀(美國蘭博公司),包括二元高壓泵、Mode 201紫外檢測器、Kromasil C18色譜柱;AUX220型雙量程分析天平(日本島津公司);SE-80型超聲波清洗機(jī)(寧波新芝生物科技股份有限公司);ZN-100型高速中藥粉碎機(jī)(長沙市岳麓區(qū)中南制藥機(jī)械廠)。

1.2 試藥

綿茵陳藥材(500 g,原產(chǎn)地重慶,重慶慧遠(yuǎn)藥業(yè)有限公司,批號(hào)150401);綠原酸對照品(中國食品藥品檢定研究院,批號(hào)151558-201207);無水乙醇及其他試劑均為分析純。

2 方法與結(jié)果

2.1 綠原酸含量測定

2.1.1 色譜條件與系統(tǒng)適用性試驗(yàn)

色譜柱:YMC-Pack Pro C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動(dòng)相:乙腈 - 水(10 ∶90);檢測波長:345 nm;流速:1.0 mL /min;柱溫:30 ℃ ;進(jìn)樣量:10 μL。理論板數(shù)按綠原酸峰計(jì)均不低于5 000,綠原酸與相鄰峰分離度均大于1.5。色譜圖見圖1。

2.1.2 溶液制備

對照品溶液:稱取綠原酸對照品21.50 mg,精密稱定,置100 mL容量瓶中,用甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為對照品貯備液,精密量取5 mL,置25 mL容量瓶中,加甲醇至刻度,搖勻,即得(含綠原酸 43 μg /mL)。

圖1 綿茵陳高效液相色譜圖

供試品溶液:取綿茵陳藥材,40℃恒溫干燥1.5 h后,粉碎,過40目篩,精確稱取5 g,用溶劑浸提,過濾,提取液用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸發(fā)濃縮,定容至100 mL容量瓶中。精密吸取10 mL,揮干溶劑,殘?jiān)眉状挤执稳芙猓D(zhuǎn)移至25 mL容量瓶中,加甲醇至刻度,搖勻,濾過,取續(xù)濾液,即得。

2.1.3 方法學(xué)考察

精密度試驗(yàn):精密吸取同一對照品溶液10 μL,注入液相色譜儀,連續(xù)進(jìn)樣6次,測定綠原酸峰面積。結(jié)果的RSD為0.30%(n=6),表明儀器精密度良好。

線性關(guān)系考察:分別精密量取綠原酸對照品貯備液0.5,1.0,2.0,5.0,10.0,15.0,20.0 mL,分別置 50 mL容量瓶中,用甲醇稀釋至刻度。分別取10 μL注入液相色譜儀,記錄色譜圖,測定其峰面積,并以峰面積值(Y)對進(jìn)樣質(zhì)量濃度(X)進(jìn)行線性回歸,得回歸方程Y=13.955 X+7.944 8,r=0.999 3(n=7)。結(jié)果表明,綠原酸質(zhì)量濃度在 2.15 ~86.00 μg/mL 范圍內(nèi)與峰面積線性關(guān)系良好。

穩(wěn)定性試驗(yàn):精密吸取同一對照品溶液和供試品溶液,分別于 0,2,4,6,8,12,24 h 時(shí)連續(xù)進(jìn)樣 3 次,各 10 μL,測定綠原酸峰面積。結(jié)果的 RSD分別為 0.40%和0.80%(n=7),表明溶液在24 h內(nèi)基本穩(wěn)定。

重復(fù)性試驗(yàn):按擬訂含量測定方法,取同一批號(hào)藥材,同時(shí)制備6份供試品溶液,精密吸取10 μL注入液相色譜儀,計(jì)算綠原酸質(zhì)量分?jǐn)?shù)。結(jié)果的 RSD為1.30%(n=6),表明方法重復(fù)性良好。

加樣回收試驗(yàn):取已知含量的供試品6份,分別精密加入一定量的綠原酸對照品,照供試品溶液制備方法制備溶液,精密吸取 10 μL,注入色譜儀中,測定峰面積,計(jì)算回收率。結(jié)果見表1。

2.2 提取工藝單因素考察

提取溶劑:準(zhǔn)確稱取3份樣品,分別以純水、40%乙醇、70%乙醇為提取溶劑,固液比(粗粉∶溶劑)為 1∶30(g/mL),浸漬24 h,用2.1.2項(xiàng)下方法制備供試品溶液并進(jìn)樣,測定綠原酸收率,考察不同溶劑與收率的關(guān)系。結(jié)果見圖2。可見,乙醇提取時(shí)收率明顯升高,故初步確定提取溶劑為乙醇。

表1 綠原酸加樣回收試驗(yàn)結(jié)果(n=6)

圖2 提取溶劑對綠原酸收率的影響

提取方法:準(zhǔn)確稱取3份樣品,選擇70%乙醇為提取溶劑,固液比(粗粉 ∶溶劑)為 1 ∶30(g/mL),提取 2 次,用2.1.2項(xiàng)下方法制備供試品溶液并進(jìn)樣,比較超聲法(110 kHz,30 ℃ ,每次 30 min),滲漉法(浸泡 24 h,流速為 2 mL /min,直至無色),回流法(1.5 h /次)的提取效果,考察不同提取方法與收率的關(guān)系。結(jié)果見圖3。可見,從左到右收率依次為 0.186,1.608,1.234 mg /g,超聲提取收率最大,綿茵陳以超聲提取為佳。

圖3 提取方法對綠原酸收率的影響

乙醇體積分?jǐn)?shù):準(zhǔn)確稱取5份樣品,在溫度為30℃、提取時(shí)間為30 min、提取次數(shù)為2次、固液比(粗粉∶溶劑)為 1 ∶30(g/mL)的條件下,考察乙醇體積分?jǐn)?shù)與收率的關(guān)系。結(jié)果見圖4。隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的升高,綠原酸收率上升,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)達(dá)到60%時(shí)提取率達(dá)到最大值,繼續(xù)升高乙醇體積分?jǐn)?shù),提取率反而下降,故確定乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%。

圖4 乙醇體積分?jǐn)?shù)對綠原酸收率的影響

提取溫度:準(zhǔn)確稱取5份樣品,在乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%、提取時(shí)間為30 min、提取次數(shù)為2次、固液比(粗粉 ∶溶劑)為 1 ∶30(g/mL)的條件下,考察提取溫度對收率的影響。結(jié)果見圖5。綠原酸的收率起初隨溫度的升高而增加,35℃時(shí)收率達(dá)到最高,為 5.280 mg/g,以后收率逐漸下降。可能是由于溫度的升高加速了綠原酸的分解,因此乙醇提取綠原酸溫度以35℃為最佳。

圖5 提取溫度對綠原酸收率的影響

提取時(shí)間:準(zhǔn)確稱取5份樣品,在乙醇體積分?jǐn)?shù)為60% 、溫度為 35 ℃、固液比為 1 ∶30(g/mL)、提取次數(shù)為2次的條件下,考察超聲時(shí)間對收率的影響。結(jié)果見圖6。隨著超聲時(shí)間的延長,綠原酸收率呈正增長趨勢,時(shí)間越長收率越高,但趨勢越來越緩,因此提取時(shí)間以30 min為宜。

圖6 提取時(shí)間對綠原酸收率的影響

提取固液比:準(zhǔn)確稱取5份樣品,在乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%、溫度為35℃、提取時(shí)間為30 min、提取次數(shù)為2次的條件下,考察固液比對收率的影響。結(jié)果見圖7。隨著固液比的增加,綠原酸的收率明顯增加。因?yàn)樵黾犹崛∪軇┯昧磕茉黾庸桃航佑|面積,提高溶質(zhì)擴(kuò)散速率,從而提高提取率。當(dāng)固液比提高到1∶30以后,收率增加幅度降低。綜合考慮收率和乙醇回收,故固液比選用1∶30較合理。

圖7 提取固液比對綠原酸收率的影響

提取次數(shù):準(zhǔn)確稱取3份樣品,在乙醇體積分?jǐn)?shù)為60%、溫度為 35 ℃、提取時(shí)間為 30 min、固液比為 1 ∶30(g/mL)的條件下,考察提取次數(shù)對收率的影響。結(jié)果見圖8。提取次數(shù)越多,提取率越高,但單次提取效率越低,且雜質(zhì)也相對增加,因此提取2次效果較好。

圖8 提取次數(shù)對綠原酸收率的影響

2.3 提取工藝正交試驗(yàn)優(yōu)選

考慮到4種因素的相互作用及提取液濃縮、雜質(zhì)含量的問題,試驗(yàn)選擇乙醇作為提取溶劑,以乙醇體積分?jǐn)?shù)(因素 A)、提取時(shí)間(因素 B)、提取溫度(因素 C)、固液比(因素D)進(jìn)行4因素3水平的 L9(34)正交試驗(yàn)。結(jié)果見表2至表4。因素A和因素C對結(jié)果影響顯著;因素B和因素D對提取影響不顯著。結(jié)合單因素試驗(yàn),綜合考慮提取液濃縮等因素,確定超聲輔助提取綿茵陳粗粉綠原酸的最佳工藝參數(shù)為A2B2C3D1,即乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,提取時(shí)間 30 min,提取溫度 35 ℃ ,固液比 1 ∶20(g/mL),提取2次,綿茵陳綠原酸收率為109.9 mg(每20 g藥材),即試驗(yàn)5中條件為最佳試驗(yàn)條件。

表2 提取工藝正交試驗(yàn)因素水平表

表3 提取工藝正交設(shè)計(jì)試驗(yàn)結(jié)果(n=9)

表4 方差分析結(jié)果

3 討論

采用高效液相色譜法測定綠原酸含量已多見報(bào)道,但文獻(xiàn)中色譜條件的流動(dòng)相中加入了緩沖鹽,其流動(dòng)相組成為 0.2 mol/L 磷酸二氫鈉緩沖液 - 甲醇(75 ∶25),調(diào)pH至3.0,由于緩沖鹽對液相系統(tǒng)及色譜柱損傷較大,故本研究中未采用。另見文獻(xiàn)報(bào)道,流動(dòng)相組成為[甲醇 -3%醋酸水溶液(15∶85)],其中醋酸比例較高,且峰形拖尾。因此,本研究中從色譜柱的篩選著手,首先嘗試使用較常用的 Zorbax SB-C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm,美國安捷倫公司)為色譜柱,以乙腈 - 水(10 ∶90)為流動(dòng)相,檢測波長為 345 nm,流速為 1.0 mL/min,柱溫為30℃,進(jìn)樣量為10 μL,但主峰拖尾,可能原因?yàn)樵摽钌V柱填料并未封端,殘存的硅醇基與待測物發(fā)生氫鍵作用造成拖尾。經(jīng)過篩選,色譜柱選用了日本YMC -Pack Pro C18柱(250 mm ×4.6 mm,5 μm),該色譜柱在傳統(tǒng)ODS柱基礎(chǔ)上采用更高純度硅膠基質(zhì)及更先進(jìn)端基封尾技術(shù),與傳統(tǒng)ODS柱相比,具有更好的耐久性及批次重復(fù)性,對綠原酸具有更好的分離效果,且主峰峰形良好。因此,本研究中最終采用文中的色譜條件,其組成簡單,重復(fù)性好,適于分析茵陳中的綠原酸[9-13]。

本研究中選擇超聲法、滲漉法、回流法3種常見中藥提取方法對有效成分進(jìn)行提取,比較了不同溶劑、不同提取溫度與提取時(shí)間、不同提取固液比等對綠原酸收率的影響。在考察單次提取時(shí)間與提取次數(shù)時(shí)發(fā)現(xiàn),提取30 min與更長時(shí)間,提取2次與3次的綠原酸收率幾乎相同,考慮到提取時(shí)間越長、次數(shù)越多,雜質(zhì)含量越高,最終確定以較短時(shí)間、較少次數(shù)進(jìn)行綠原酸的提取;在乙醇體積分?jǐn)?shù)考察時(shí)發(fā)現(xiàn),隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的升高,綠原酸收率也隨之升高,但乙醇體積分?jǐn)?shù)超過60%時(shí),收率反而下降,可能與由于高體積分?jǐn)?shù)乙醇使得一些大分子物質(zhì)和綠原酸產(chǎn)生共沉淀現(xiàn)象,造成綠原酸的損失有關(guān)[14-15]。

結(jié)合正交試驗(yàn)結(jié)果,從便于控制、成本低、周期短三方面考慮,最終確定最佳工藝條件為乙醇體積分?jǐn)?shù)60%,單次提取時(shí)間30 min,提取2次,提取溫度35℃,固液比1∶20(g/mL),在此條件下綿茵陳綠原酸的收率為 109.9 mg(每 20 g 藥材)。

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