周 爽,王 琰,孫光強,史永恒,王 川,王國全,李 敏,王 斌
(陜西中醫藥大學,陜西 咸陽 712046)
缺血性腦卒中嚴重危害人類健康,目前使用纖栓劑溶栓是臨床首選治療手段,但重建血流導致再灌注腦損傷,即腦缺血/再灌注損傷(Cerebral ischemic/reperfusion injury,CI/RI),神經保護治療則成為應用前景。CI-RI是多種機制參與的一種復雜病理生理過程,研究表明,當腦缺血再灌注發生時,在缺血灶局部存在大量炎癥因子,炎癥反應是引起腦缺血損傷后再灌注損傷的關鍵原因之一[1]。因此,通過改善炎癥損傷來減輕腦缺血損傷,并可調節炎性因子失衡[2],研究引起損傷的炎癥反應無論是對缺血性腦卒中還是對之后的CI/RI都有著重要意義。腦缺血損傷發生后花生四烯酸含量增加,5-脂氧合酶(5-Lipoxygenase,5-LOX)作用花生四烯酸代謝衍生白三烯和生物活性物質的產生,這類活性物質將參與中風后的病理生理過程,例如氧化應激和炎癥,還可能促成細胞凋亡[3-4]。5-LOX與炎癥性中樞神經系統疾病有關,5-LOX的過表達可能促進炎癥細胞因子的產生并導致CI/RI后神經元損傷更為嚴重[5]。
小膠質細胞(Microglia,MG)是腦內的固有免疫細胞,在CI/RI發生后的炎癥反應中起重要作用[6]。在腦缺血損傷后期,由于MG被過度激活,激活后的MG表達產生趨化因子和炎性因子,炎性因子聚集在腦缺血損傷部位,進一步加劇腦損傷[7]。隨著MG在中樞神經系統中的日益關注,5-LOX通路也被認為參與了中樞神經系統的炎癥反應[8-9],MG中5-LOX通路的下調有助于缺血性腦損傷的恢復,但研究5-LOX,其最大的特點是能夠在體內外轉染分裂和非分裂的細胞,是一種具有自我失活功能、無免疫反應的高效基因傳遞工具。并且具有容納外源目的基因,可將所攜帶的目的基因整合到宿主染色體中并穩定長期表達、隨親本的繁殖將外源基因傳遞給子代發揮作用等優點[10]。為根據慢病毒載體技術的進展,提高效率和生物安全性的載體設計,進一步研究5-LOX途徑在CI/RI中作用機制。通過建立5-LOX過表達氧糖剝奪/復氧(OGD/R)BV2細胞模型,研究5-LOX在腦缺血炎性損傷中神經保護的作用機制。
1.1 材 料
1.1.1 細胞與質粒來源:BV2小鼠MG系購自CTCC。pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro質粒和293T細胞購自天津賽爾生物技術有限公司。脂質體Lipofectamine2000 Reagent購自Invitrogen(美國)。
1.1.2 主要試劑與儀器:LB培養基(Sigma,美國),B型質粒小量快速提取試劑盒(博大泰克,北京),XL1-Blue,EB(Ethidium Bromide北京鼎國,北京),限制型內切酶EcoRI,BamHI和dNTP (10 mmol/L)(Takara,日本),T4 DNA ligase(Promega,美國),無血清培養基Opti-MEM(Invitrogen,美國)。L420型臺式離心機(長沙湘儀離心機儀器有限公司),PTC-200型熱循環儀(Bio-Rad,美國),CO2恒溫培養箱(Thermo Forma,美國),5415D型離心機(Eppendorf,德國),DK-8B型電熱恒溫水槽購自(上海精宏實驗設備有限公司),倒置顯微鏡和96孔培養板(OLYMPUS,日本)。
1.2 研究方法
1.2.1 BV2細胞培養:BV2細胞是小鼠小膠質細胞株,使用DMEM完全培養基(含有10%胎牛血清,100 U/ml青霉素與100 μg/ml鏈霉素)在二氧化碳培養箱(5%CO2,37 ℃條件)中培養、傳代。
1.2.2 BV2細胞感染過表達5-LOX病毒/對照病毒: pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro質粒載體(圖1)。將Alox5序列信息序列直接合成至pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro載體上。復蘇并培養的293T細胞,給予DMEM完全培養基。在37 ℃、5%CO2的培養箱中培養293T細胞,培養過程中,每24 h換液,傳代比例為1∶5~1∶10。將pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro質粒載體轉染293T細胞進行慢病毒包裝,收集上清液,濃縮制成病毒顆粒,同樣方法構建空載體病毒。病毒顆粒感染BV2小膠質細胞,G418進行細胞致死率篩選,挑選穩定轉染的單克隆抗體細胞株。我們將G418藥物設置4個濃度梯度來細胞致死率的濃度篩選,濃度設置分別為200、300、400 μg/ml、500 μg/ml。細胞大量死亡出現在第3天到第8天中,除去死亡細胞,收集活下來的細胞形成單克隆,并將感染后的細胞轉至96孔板,繼續培養。

圖1 pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro/Alox5質粒
1.2.3 建立OGD/R 5-LOX過表達BV2細胞模型:5-LOX過表達的BV2細胞在完全培養基中培養,收集第三代細胞,胰蛋白酶將BV2細胞從培養瓶中消化下來,BV2細胞制成懸液。調整細胞密度,將細胞再次接種于細胞培養板中,細胞中的完全培養液更換為無糖Earle’s液,利用三氣培養箱37 ℃下(94%氮氣、5%二氧化碳、1%氧氣)建立缺氧缺糖模型。在氧糖剝奪實驗中,BV2細胞分為5-LOX病毒過表達組與CON空病毒載體組,氧糖剝奪分別0、1、2、4 h,復氧12 h,根據顯微鏡下拍攝OGD處理0、1、2、4 h的細胞形態,確立OGD/R 5-LOX過表達BV2細胞模型。
1.2.4 細胞給藥及分組:BV2細胞5-LOX過表達組與空載體對照組給予齊留通(Zileuton)、孟魯司特(Montelukast)、U75302被用來分別阻斷5-LOX,CysLTR1和BLT1通路。將細胞分為以下10組,正常組按照常規細胞培養方法,給予完全培養液,并不進行OGD/R的處理。5-LOX過表達組給予5-LOX過表達病毒轉染;除空白組外其他組均進行缺糖缺氧/復氧處理,給藥組分別給予Zileuton、Montelukast、U75302處理。見表1。

表1 實驗分組與給藥
1.2.5 MTT檢測OGD/R5-LOX過表達BV2細胞的細胞活性:按照實驗分組將細胞接種與96孔板上,除空白組外,均進行OGD/R處理細胞,進行細胞活性檢驗,除設空白孔外,空載體與5-LOX過表達10個分組,分別各設置3個復孔,分別向每孔加入5 mg/ml MTT 20 μl,放置于(37 ℃,5%CO2)培養箱繼續培養4 h,棄去培養液,PBS沖洗,每孔加入150 μl DMSO溶解沉淀。酶標儀將波長設置為570 nm,測出各孔的吸光度值。抑制率=[(對照組-實驗組)/對照組]×100%。
1.2.6 流式細胞術檢測細胞凋亡:將空載體與5-LOX過表達10個分組的各組細胞用0.25%的胰蛋白酶消化,加入10 μl碘化丙啶(PI)染色液混勻,室溫避光20 min,將避光后的細胞置于冰水混合物中,使用流式細胞儀進行檢測。PI熒光信號值用縱坐標表示,Annexin-V-FITC熒光信號值表示為橫坐標。碘化丙啶染色對正常細胞是無法染色的,LR區域屬于細胞膜完整,PI染色。UR區域中的細胞膜破裂,PI和Annexin-V-FITC均可染色。

2.1 全基因合成pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro/Alox5質粒測序結果比對 結果顯示(圖2),Alox5測序結果比對結果顯示,pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro/Alox5質粒全基因合成成功。

圖2 pHBLV-CMV-MCS-3flag-EF1-puro/Alox5質粒
2.2 5-LOX過表達轉染后對BV2細胞形態的影響 細胞形態結果見圖3。與空載體對照組氧糖剝奪0 h對比,空載體對照組氧糖剝奪1、2、4 h后細胞數目逐漸減少,細胞形態改變,空白組細胞形態完整,呈現梭形。空載體對照組OGD后細胞逐漸形成“阿米巴狀”,5-LOX過表達則增加細胞損傷,給藥組分別能減緩細胞的“阿米巴狀”。根據前期實驗,氧糖剝奪復氧時間,由細胞生長狀態改變,我們選取缺氧4 h復氧12 h為腦缺血體外模型。

圖3 缺氧不同時間各組細胞形態(PI染色,×200)
2.3 OGD/R 5-LOX過表達對BV2細胞增殖影響 缺氧2 h復氧12 h處理條件下,檢測5-LOX過表達的小膠質細胞活力,實驗分組同1.2.4。第1組和第6組是未經過OGD/R處理的空白對照組,第2組是空載體OGD/R模型組,第7組是5-LOX過表達OGD/R模型組。空載體對照病毒OGD/R組與空白組相比活力降低,空載體對照組給予Zileuton(第3組)、Montelukast(第4組)、U75302(第5組)后,與OGD/R空載體對照組對比,給通路阻斷劑后,細胞活力較對照組有一定提高,且U75302活性優于Montelukast。病毒空載體模型組(第2組)與5-LOX過表達病毒模型組(第7組)對比,5-LOX過表達后細胞活力下降,同樣給予Zileuton、Montelukast、U75302組的細胞活性比5-LOX病毒過表達OGD/R模型組(第7組)高,5-LOX過表達Zileuton(第8組)與Montelukas(第9組)對細胞的保護作用基本接近,U75302(第10組)高于Zileuton(第8組)與Montelukas(第9組)。
2.4 OGD/R 5-LOX過表達對BV2細胞凋亡的影響 實驗分組同1.2.4。流式細胞儀檢測結果顯示,在空載體對照病毒中,空白組(第1組)與模型組OGD/R(第2組)對比,OGD/R后細胞的凋亡明顯升高,給予Zileuton(第3組)、Monteluka、U75302(第5組)能夠減弱凋亡,空載體病毒Zileuton(第3組)明顯降低細胞凋亡,接近空白(第1組),Montelukas(第4組)與U75302(第5組)降低細胞凋亡與模型組OGD/R對比差異有統計學意義(均P<0.05)。5-LOX過表達與空病毒空白組對比后,過表達的5-Lox病毒對細胞凋亡增加較小。模型組與空白組對比均具有統計學差異(P<0.01),給藥組與模型組對比均具有統計學差異(P<0.01)。
空病毒對照組中,UR和UL區域細胞染色都是0%,在LL區域99%,細胞膜完整,LR區域0.86%,表示僅有極少凋亡細胞;空病毒組OGD/R后,細胞分別在UR區域0.221%,UL區域0.412%,細胞膜破裂,膜內磷脂酰絲氨酸被染色;在空病毒Zileuton組,細胞集中LL區域,UL與UR區域0%,僅有LR區域1.44%的凋亡細胞;空病毒Montelukast組中UL與UR區域0%,LR區域凋亡細胞2.73%;空病毒U75302組中,UL區域0.021%,UR區域0.126%,LR區域2.56%,與Montelukast、Zileuton組對比,U75302組中細胞死亡和細胞壁破裂較多。5-LOX病毒過表達對照組中,UR區域0%,LR區域0.087%,在LL區域90.6%的細胞膜完整,LR區域9.32%,與空載體對照組相比,5-LOX過表達后,細胞膜破裂出現,細胞出現死亡和晚期凋亡;空病毒組OGD/R后,細胞分別在UR區域1.48%,LR區域10.9%,細胞凋亡與死亡進一步增加;5-Lox過表達Zileuton組,細胞4個區域具有分布,UL:0.153%,UR:0.123%,LR:2.56%,細胞凋亡得到改善;5-LOX過表達U75302組中,UL:0.021%,UR:0.126%,LR:2.56%,與Zileuton組對比,U75302組中UR和UL區域細胞染色都是0%,在LL:97.1%,LR:2.87%,表示僅有極少凋亡,細胞死亡和細胞壁破裂減少。
CI/RI后引起繼發性損傷,炎性反應的發生不但與MG等中樞神經系統免疫細胞活化有關[11],損傷發生后小膠質細胞迅速活化,變成具有吞噬能力的“阿米巴狀”,同時釋放大量細胞因子和炎癥介質,會引起繼發性腦損傷。5-LOX屬于一類稱為脂氧合酶的酶,可氧化游離和酯化的多不飽和脂肪酸。5-LOX作用花生四烯酸代謝衍生白三烯,生成白三烯A4(LTA4),LTA4通過其酶促反應轉化為白三烯B4(LTB4)和白三烯C4(LTC4)[12-13]。LTB4受體可分為BLT1和BLT2,LTC4可生成半胱氨酸白三烯受體CysLT1和CysLT2,它們可以識別白三烯LTD4、LTD4、LTE4和LTF4。實驗結果得出5-LOX過表達增加細胞損傷。以5-LOX過表達病毒轉染BV2細胞的手段,通過顯微鏡拍照觀察,在不同缺糖缺氧時間中,細胞形態損傷變化情況。并根據細胞形態,篩選缺糖缺氧復氧模型的時間。BV2細胞采用OGD/R模型,模擬腦缺血再灌注損傷。基于前期對BV2的缺氧實驗研究發現,在腦缺血損傷后,BV2被激活,細胞炎性因子增加。本次實驗發現缺氧超過4 h就會對BV2的生長造成一定影響,缺氧1 h對細胞影響不大,但也不能很好的造成氧糖損傷模型,缺氧6 h后,細胞呈現“阿米巴狀”較多,且BV2細胞的數量減少,細胞存活率下降。實驗組最終確立模型時間為缺氧缺糖4 h,復氧12 h模型。
Zileuton作為5-LOX的抑制劑,它可有效地衰減在PC12細胞中的MG介導的魚藤酮毒性[14]。在實驗研究中,5-LOX上調在低氧血癥患者的大腦皮層中,5-LOX在MG表達中升高[15]。這些結果表明5-LOX途徑與MG炎癥引起的神經元死亡有關。LTB4和CysLT1和CysLT2是主要的促炎介質,5-LOX途徑在許多疾病中均被激活引起炎癥反應[16]。研究發現CysLTs在各種神經調節過程具有重要調節作用,CysLTs及其受體與多種神經退行性疾病相關,例如多發性硬化癥,帕金森氏病,亨廷頓氏病,癲癇和阿爾茨海默氏病[17]。抗白三烯藥物分為兩類:CysLT受體拮抗劑(扎魯司特,普侖司特和孟魯司特Montelukast)和LTs抑制劑(5-脂氧合酶抑制劑,例如齊留通Zileuton,ZD2138,BayX1005和MK-0591)。白三烯B4(LTB4)參與多種疾病中發生的炎癥,U75302是BLT1受體拮抗劑,LTA4水解酶是LTB4生產中的限速酶,拮抗劑的使用均可以降低炎性反應[18-19]。選擇性5-LOX抑制劑Zileuton和CysLTR1拮抗劑Montelukast可減輕膠質細胞的炎性損傷提高細胞活力[20]。U75302是LTB4的受體阻斷劑,使用U75302阻斷LTB4/BLT1信號通路已被用于緩解各種炎癥和線粒體功能障礙[21]。Montelukast是白三烯的受體抑制劑,它可以降低LPS刺激的人類嗜中性粒細胞活化,同時減輕急性呼吸窘迫綜合征(ARDS)小鼠模型的炎癥[22]。
綜上所述,通過探索5-LOX通路在氧糖剝奪/復氧小膠質細胞,我們發現過表達的5-LOX可以介導小膠質細胞OGD/R的損傷和激活。在OGD/R誘導的腦缺血損傷中,5-LOX激活是通過5-LOX過表達介導的BV2細胞中CysLTRs/CysLTs和LTB4/BLTs途徑的氧化應激介導的,這一結果能夠為腦缺血/再灌注損傷的診斷和臨床治療提供分子基礎[23]。