




摘 要:本文旨在建立一種紅發(fā)夫酵母中蝦青素含量的高效液相檢測方法,包括樣品前處理條件及檢測條件的優(yōu)化。結(jié)果表明,蝦青素含量在0.25 ~16 mg/L范圍內(nèi),其含量與峰面積呈線性相關(guān)關(guān)系,相關(guān)系數(shù)為0.999 9。建立了一種紅發(fā)夫酵母中蝦青素含量檢測的液相方法,為天然蝦青素的研究提供分析途徑。
關(guān)鍵詞:紅發(fā)夫酵母;蝦青素;液相檢測方法
蝦青素主要來源于化學(xué)合成和生物合成,據(jù)報道,化學(xué)合成的蝦青素約占市場的95%[1],但在使用上,人們更加傾向于生物合成的蝦青素[2],且化學(xué)合成的蝦青素存在生產(chǎn)周期長、合成步驟煩瑣、在過程中會產(chǎn)生大量副產(chǎn)物的缺點[3]。生物合成蝦青素的方法主要為微生物發(fā)酵[4]和雨生紅球藻培養(yǎng)[5],其中微生物發(fā)酵工藝生產(chǎn)蝦青素具有周期短,產(chǎn)量高的優(yōu)點,目前是生產(chǎn)蝦青素的研究重點。其中利用紅發(fā)夫酵母生產(chǎn)蝦青素是國內(nèi)微生物發(fā)酵普遍采用的方法[6]。紅發(fā)夫酵母可利用多種碳源和氮源生產(chǎn)蝦青素,且具有易控制、細胞生長繁殖速度快的特點,可實現(xiàn)高密度培養(yǎng),生產(chǎn)周期短,成本低等優(yōu)點,且其蝦青素狀態(tài)是游離態(tài),更易于吸收[7],故可直接作為飼料或者食品添加劑[8-9]。同時,由于蝦青素有良好的抗氧化活性,一些化妝品中也有應(yīng)用[10-11]。
蝦青素存在于紅發(fā)夫酵母的細胞內(nèi)[12],然而紅發(fā)夫酵母的細胞壁非常致密且堅固[13],這使得蝦青素的獲取較為困難,也對檢測的準(zhǔn)確性增加了難度。目前紅發(fā)夫酵母的破壁方法主要有有機溶劑法破壁、酶法破壁、酸熱法破壁、堿法破壁[14],酸熱法破壁及有機溶劑法破壁后均可得到最高濃度的蝦青素,但由于有機溶劑是有毒的,存在安全隱患[15]。雖然利用有機溶劑法破壁并不適用于生產(chǎn),但在檢測使用中可以提升檢測的效率和準(zhǔn)確度。
1 材料與方法
1.1 材料
第一,主要試劑。蝦青素標(biāo)準(zhǔn)品(98%,阿拉丁);色譜甲醇(百靈威);色譜乙腈(百靈威);無水甲醇(AR,國藥集團);二甲基亞砜(AR,國藥集團);N,N-二甲基甲酰胺(AR,國藥集團)
第二,儀器設(shè)備。高效液相色譜儀(型號:Waters2695,Waters);二極管陣列檢測器(型號:Waters2996,Waters);全波長酶標(biāo)儀(SpectraMax 190,Molecular Devices);超聲波清洗儀(型號:SK7210HP,上海科導(dǎo));分析天平(型號:BS210S,賽多利斯)
1.2 方法
第一,色譜條件。色譜柱:Gemini? C18(250 mm×
4.6 mm,5 μm),Phenomenex;柱溫:30 ℃;流速:1 mL/min;進樣量:20 μl;流動相:V甲醇:V乙腈=9:1;檢測波長:478 nm。
第二,蝦青素標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制。精確稱取蝦青素標(biāo)準(zhǔn)品5~10 mg,先用適量N,N-二甲基甲酰胺溶解,再用無水甲醇定容至100 ml棕色容量瓶中,配制得到50~100 mg/L的蝦青素標(biāo)準(zhǔn)品母液,再用無水甲醇分別稀釋成一定梯度濃度(0.25、0.50、1.0、2.0、4.0、8.0、16.0 mg/L)的蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液,經(jīng)0.45 μm膜過濾后檢測,并根據(jù)色譜峰面積及標(biāo)準(zhǔn)品濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
第三,樣品前處理。吸取紅發(fā)夫酵母發(fā)酵液1 mL,加入預(yù)熱后的DMSO超聲5 min進行破壁處理,再加入適量無水甲醇超聲10 min提取,觀察菌體顏色完全變白,即提取完全,取清液經(jīng)0.45 μm膜過濾后待測。
2 結(jié)果與討論
2.1 色譜條件的優(yōu)化
第一,檢測波長的確定。取適量蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液利用酶標(biāo)儀進行全波長掃描,掃描結(jié)果顯示(圖1),蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液在478 nm波長處有最大吸收,因此確定蝦青素的液相檢測波長為478 nm。
第二,流動相的優(yōu)化。對蝦青素總量進行檢測,選擇流動相為一定比例的甲醇和乙腈,有報道[16]稱V甲醇:V乙腈=90:10為最佳比例,對其比例進行驗證,選擇V甲醇:V乙腈比例分別為80:20、85:15、90:10、95:5、100:0,如圖2所示,綜合考慮成本問題及峰型,確定V甲醇:V乙腈=90:10為最佳比例。
第三,流速的確定。保持其他色譜條件不變,對檢測的流速進行驗證,分別選擇0.6、0.8、1.0、1.2 mL/min的流速。檢測結(jié)果顯示(圖3),流速越高,出峰時間越早,保留時間越短。當(dāng)流速為0.6、0.8 mL/min時,保留時間過長,峰型變形,不利于樣品分析;當(dāng)流速為1.0 mL/min時,峰型較好,出峰時間和保留時間適宜;當(dāng)流速為1.2 mL/min時,峰型有些變形,液相系統(tǒng)顯示柱壓較高,降低色譜柱的耐用性,同時對泵也會產(chǎn)生一定的影響。故而選擇蝦青素的液相檢測流速為1.0 mL/min。
第四,柱溫的選擇。其他色譜條件保持不變,分別在25、30、35、40 ℃柱溫條件下對蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液進行檢測,觀察色譜峰的峰型及分析效果。圖4顯示在25 ℃時,開始色譜峰的峰型較好,但隨著進樣次數(shù)的增加,色譜峰會出現(xiàn)出峰不穩(wěn)定且峰型變形的情況;30 ℃柱溫條件下,色譜峰的峰型標(biāo)準(zhǔn),出峰的時間也很穩(wěn)定;35 ℃和40 ℃柱溫條件下,雖然峰型好,但峰面積變小,同時溫度高會導(dǎo)致能耗增加及降低色譜柱的耐用性。故而最終選擇色譜柱的柱溫為30 ℃。
2.2 蝦青素標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制
將配制的梯度濃度的蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液進行液相測定。以蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液的色譜峰面積(x)為橫坐標(biāo),以蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度(y)為縱坐標(biāo),繪制蝦青素濃度峰面積標(biāo)準(zhǔn)曲線,如圖所示,得回歸方程為y=4.221E-06x,
R2=0.999 9。顯示蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液在(0.25 mg/L~16 mg/L)的濃度范圍內(nèi)與色譜峰面積的線性關(guān)系良好。
2.3 樣品前處理條件的優(yōu)化
第一,DMSO添加量的選擇。對于紅發(fā)夫酵母的破壁,考慮實際操作和檢測的可行性,選擇有機溶劑破壁方法,本研究選擇DMSO作為破壁溶劑[17]。其他條件一致,選擇DMSO體積:紅發(fā)夫酵母發(fā)酵液的體積分別為0:1、2.5:1、5:1、7.5:1、10:1,破壁提取后,液相檢測蝦青素含量,結(jié)果如圖6所示,隨著兩者體積比的增加,檢測的蝦青素的含量越高,當(dāng)兩者比到達5:1時,增加DMSO添加量,檢測蝦青素含量變化不大。故而選擇DMSO體積:紅發(fā)夫酵母發(fā)酵液的體積為5:1時為DMSO的最佳添加量。
第二,破壁時間的確定。其他條件一致,超聲破壁時間分別設(shè)置2 min、5 min、10 min、15 min,破壁提取后,液相檢測蝦青素含量,結(jié)果如圖7所示,隨著超聲時間的增加,檢測蝦青素的含量越高,超聲時間5 min時,增加超聲時間,檢測蝦青素含量變化不大,到15 min時,檢測含量有所降低,推測可能破壁時間增加導(dǎo)致蝦青素失活。故而選擇超聲破壁時間5 min為破壁最佳時間。
第三,提取時間的確定。蝦青素液相檢測的流動相90%為甲醇,蝦青素在甲醇中的溶解度尚可,故選擇蝦青素的提取溶劑為無水甲醇。其他條件一致,超聲破壁后,加入適量甲醇進行超聲提取,時間分別設(shè)置為5 min、10 min、15 min、20 min,隨后甲醇定容,液相檢測蝦青素含量,結(jié)果如圖8所示,隨著超聲提取時間的增加,檢測蝦青素的含量越高,超聲時間為10 min時,增加超聲時間,檢測蝦青素含量變化不大,到20 min時,檢測含量有所降低,推測出可能因提取時間的增加而導(dǎo)致蝦青素失活。故而選擇超聲提取時間10 min為破壁最佳時間。
2.4 加標(biāo)回收率的檢測結(jié)果
在濃度為8.62 mg/L和3.42 mg/L的提取液中分別加入一定濃度的蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液,每個濃度重復(fù)3次,結(jié)果如表1所示,蝦青素的加標(biāo)回收率為97.51%~103.17%,效果良好,表明檢測方法可行。
結(jié)語
本研究通過對最大吸收波長、流動相的比例、檢測流速及檢測柱溫等條件進行驗證,得到蝦青素的最佳液相檢測條件如下:檢測波長為478 nm、流動相為V甲醇:V乙腈=9:1、流速為1 ml/min、柱溫為30 ℃,在此色譜條件下,蝦青素峰型較好,蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液的峰面積與濃度呈現(xiàn)較好的線性相關(guān);通過對紅發(fā)夫酵母發(fā)酵液前處理條件進行探究,得到前處理條件為:樣品經(jīng)DMSO(V樣品:VDMSO=1:5)破壁5 min,再利用甲醇超聲提取10 min,經(jīng)0.45 μm濾膜過濾后進行檢測,蝦青素提取檢測效果達到理想水平。
天然蝦青素?zé)o論是在實際應(yīng)用效果上,還是在生物安全性能方面,都具有明顯優(yōu)于化學(xué)合成蝦青素的特點[18],本研究建立紅發(fā)夫酵母中蝦青素的高效液相檢測方法,旨在為天然蝦青素的檢測提供可選用的方法,以期為天然蝦青素的研究作出貢獻。
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