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酵母發(fā)酵技術(shù)對(duì)黃芪中多糖含量的影響

2012-04-23 04:12:28劉必旺徐榮芳薛慧清李艷彥閆潤紅
關(guān)鍵詞:酵母菌

郭 羽,劉必旺,徐榮芳,薛慧清,李艷彥,閆潤紅,周 然

(山西中醫(yī)學(xué)院,山西太原030024)

黃芪為豆科植物蒙古黃芪或膜莢黃芪的根,為我國常用藥材的大宗品種。黃芪多糖具有提高機(jī)體免疫、抗菌、抗病毒、抗衰老、抗腫瘤等生理功能[1],然而,采用傳統(tǒng)水煎提取黃芪多糖產(chǎn)率并不高[2]。微生物發(fā)酵中藥是近年來新興的中藥炮制技術(shù),本文以酵母菌為發(fā)酵菌株,對(duì)黃芪藥材進(jìn)行發(fā)酵處理,以提高黃芪多糖產(chǎn)率,增強(qiáng)黃芪的治療作用。

1 實(shí)驗(yàn)材料

1.1 藥品與試劑

黃芪(產(chǎn)地山西應(yīng)縣),經(jīng)鑒定為豆科植物蒙古黃芪,作為發(fā)酵藥材時(shí)粉碎成65目粉末。葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品購自中國食品藥品檢定研究院,批號(hào):110833-200904;苯酚、無水乙醇、濃硫酸均為分析純;釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae),由山西大學(xué)生物技術(shù)研究所提供;豆芽汁培養(yǎng)基。

1.2 實(shí)驗(yàn)儀器

自動(dòng)電熱高壓蒸汽滅菌器;DHP-9162型電熱恒溫培養(yǎng)箱;pH測定計(jì);圖華SHA-C恒溫振蕩器;THZ-D臺(tái)式恒溫振蕩器(空氣浴);微型Sigmal-14離心機(jī);KDC-1044低速離心機(jī);單目顯微鏡;正置熒光顯微鏡;BS 224S-L電子天平;紫外分光光度計(jì)cary50(美國);萬能粉碎機(jī);無菌操作臺(tái)。

2 實(shí)驗(yàn)方法

2.1 菌種活化與液體發(fā)酵種子培養(yǎng)

將低溫保藏的菌種取出,無菌操作接種于斜面培養(yǎng)基上,于28℃下培養(yǎng)24 h,重復(fù)3次,作為活化后菌種備用。將活化菌種無菌操作接種至豆芽汁液體培養(yǎng)基內(nèi),接種量為10%,于28℃、150 r/min振蕩培養(yǎng),通過鏡檢及觀察生長狀態(tài)確定種子最佳培養(yǎng)時(shí)間。

2.2 實(shí)驗(yàn)分組

無菌條件下將已滅菌的5.00 g黃芪藥材粉末加入100 mL豆芽汁培養(yǎng)基中,每瓶按10%的接種量接入液體種子,作為發(fā)酵組;對(duì)照組不接種液體種子,加入等量蒸餾水;取5.00 g原藥材按傳統(tǒng)水煎方法處理,過濾取濾液100 mL作空白對(duì)照組。發(fā)酵組與對(duì)照組置于28℃、150 r/min條件下培養(yǎng)。

2.3 pH值測定

待接種培養(yǎng)后24 h,取發(fā)酵組與對(duì)照組各3個(gè)樣品,于4200 r/min下離心10 min,取上清液,測定體積及pH值后將樣品密閉置于冰箱,之后每隔48 h同樣操作取樣1次,直至8次全部取完。

2.4 多糖含量測定

2.4.1 多糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備[3]精密稱取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品100 mg置100 mL容量瓶中,加蒸餾水至刻度,再精密吸取10 mL于另一100 mL容量瓶中,用蒸餾水定容,搖勻即得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。

精密吸取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0.2 mL,0.4 mL,0.6 mL,0.8 mL,1.0 mL分別于50 mL錐形瓶中,加蒸餾水至1.0 mL,精密加入5%苯酚溶液1 mL,搖勻,加入5 mL濃硫酸,迅速混勻,放置5 min后,于沸水浴中加熱15 min,取出冷卻。另取蒸餾水1 mL,同樣操作作為空白組。在490 nm波長下測定吸光度,以吸光度對(duì)濃度進(jìn)行回歸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程。

2.4.2 樣品的處理與測定 將冷凍保存的樣品置于室溫下融化,依據(jù)方法[4-5]取適量已融化的樣品各1.05 mL,分別加入無水乙醇使乙醇終濃度為85%,置于4℃冰箱靜置過夜,待多糖沉出再抽濾,濾餅用70%的乙醇洗滌3次,60℃水浴揮發(fā)盡乙醇,用熱蒸餾水將濾餅溶解,定容至10 mL,2000 r/min離心10 min,取上清液作為待測液。

2.4.3 待測液中多糖含量測定 精密吸取各待測液0.3 mL分別于50 mL錐形瓶中,加蒸餾水至1.0 mL,依照多糖標(biāo)準(zhǔn)曲線制備方法進(jìn)行測定,記錄各個(gè)待測液的吸光度,代入標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計(jì)算多糖的含量。

2.4.4 樣品中多糖含量測定 各樣品中多糖含量計(jì)算如下:

X為樣品中多糖的含量(mg/g);C為待測液中多糖的含量(μg/mL);V0為待測液的總體積(mL);V1為吸取的待測液的體積(mL);m為所取樣品液相當(dāng)于原始藥材量(g);

3 結(jié)果

3.1 液體發(fā)酵種子最佳培養(yǎng)時(shí)間確定

液體發(fā)酵種子培養(yǎng)72 h后,菌種生長狀態(tài)良好,菌體密度較高,鏡下顯示形態(tài)正常,選定液體種子培養(yǎng)時(shí)間為72 h。結(jié)果見圖1。

圖1 酵母菌的顯微鏡照片(10×20)

3.2 發(fā)酵液pH值變化

結(jié)果見圖2。

從圖2可以看出,對(duì)照組的pH值維持在5.3~5.6之間,變化幅度較小。發(fā)酵組的pH在5~5.5之間,波動(dòng)相對(duì)對(duì)照組較大。酵母菌最適生長pH值為4.5~5.0,在發(fā)酵第7天時(shí)pH值最接近其適宜生長值,說明第7天時(shí)發(fā)酵最旺盛。

3.3 發(fā)酵過程中多糖的變化

3.3.1 多糖的標(biāo)準(zhǔn)曲線 結(jié)果見圖3。

由圖3得回歸方程為y=1522.6x+2.0684,R2=0.9991,可得出相關(guān)系數(shù)r=0.9995,r>0.999,線性關(guān)系良好。

3.3.2 發(fā)酵過程中多糖含量的變化 結(jié)果見圖4。

圖4結(jié)果顯示,通過苯酚-濃硫酸法測定樣品多糖含量,對(duì)照組基本維持在45 mg/g左右;發(fā)酵組多糖含量從接種后就開始下降,到第7天時(shí)又稍有上升,第11天后又有升高,對(duì)照組整體高于發(fā)酵組。這是由于豆芽汁培養(yǎng)基中含有葡萄糖,而酵母菌以葡萄糖作碳源,發(fā)酵組酵母菌在生長和增殖過程中需要消耗大量葡萄糖,由于酵母菌自身代謝利用能量物質(zhì)的特點(diǎn),使得發(fā)酵組中多糖含量低于同時(shí)期的對(duì)照組中多糖含量。因此,要比較等量藥材中多糖的收率,將發(fā)酵法與傳統(tǒng)水煎法比較更有意義。

3.3.3 傳統(tǒng)水煎液與發(fā)酵組多糖含量對(duì)比 結(jié)果見表1。由表1可以看出,傳統(tǒng)水煎法中黃芪多糖的產(chǎn)量約為16.1 mg/g,產(chǎn)率為1.61%;發(fā)酵最佳時(shí)黃芪多糖的產(chǎn)量約為18.4 mg/g,產(chǎn)率為1.84%,兩種處理方法對(duì)黃芪多糖的產(chǎn)率影響相差0.23%。同時(shí),采用間接碘量法測定發(fā)酵液中只含有微量的葡萄糖,這與之前測定的發(fā)酵組發(fā)酵過程中發(fā)酵液pH值變化和多糖含量變化趨勢一致。在酵母菌生長繁殖過程中要消耗大量葡萄糖用于自身生長和代謝,由于整個(gè)實(shí)驗(yàn)過程不再額外補(bǔ)料,因此營養(yǎng)物質(zhì)消耗的同時(shí)環(huán)境中代謝產(chǎn)物也在積累,使發(fā)酵液pH值隨菌體生長而降低,到第7天時(shí)達(dá)到菌體最適宜生長pH值,此后菌體生長呈下降趨勢。

表1 傳統(tǒng)水煎液與發(fā)酵組第7天多糖含量對(duì)比

4 討論

微生物發(fā)酵中藥是在中藥發(fā)酵炮制的基礎(chǔ)上吸取微生態(tài)的研究成果,結(jié)合現(xiàn)代生物工程而形成的中藥制藥新技術(shù)[6]。自然界微生物資源豐富,經(jīng)發(fā)酵后能提高中藥有效成分含量,顯著提高藥效,并產(chǎn)生新的化合物。基于傳統(tǒng)水煎提取黃芪多糖產(chǎn)率低的現(xiàn)狀以及酵母菌易于培養(yǎng)、酶系豐富等優(yōu)點(diǎn),本文以酵母菌為發(fā)酵菌株,對(duì)黃芪藥材進(jìn)行發(fā)酵處理。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,酵母發(fā)酵技術(shù)對(duì)黃芪中多糖的產(chǎn)率有一定的影響,發(fā)酵旺盛時(shí)多糖產(chǎn)率比傳統(tǒng)水煎液要高,證明酵母菌發(fā)酵能夠提高黃芪多糖產(chǎn)量。我們推測,黃芪多糖作為黃芪纖維質(zhì)的組成部分,其提取產(chǎn)率的提高可能是酵母菌內(nèi)在酶系促進(jìn)了纖維之間的酯鍵斷裂而發(fā)是剝皮反應(yīng),使更多的多糖得以游離而釋放出來[7]。提示我們下一步工作可以采用理化或生物學(xué)方法對(duì)發(fā)酵菌株進(jìn)行定向誘變,或優(yōu)化酵母菌培養(yǎng)條件,提高發(fā)酵液黃芪多糖的產(chǎn)量。同時(shí),通過高效液相色譜等方法測定發(fā)酵液中多糖的成分,進(jìn)一步計(jì)算多糖含量會(huì)更精確。而發(fā)酵過程中是否產(chǎn)生了其他新的活性物質(zhì)也有待進(jìn)一步研究。本文對(duì)黃芪的酵母菌發(fā)酵液中的多糖含量變化進(jìn)行了研究,為今后黃芪發(fā)酵的綜合研究提供了一些資料及依據(jù)。

[1]李寶霞,董雙濤,霍乃蕊.黃芪多糖抗氧化活性研究[J].山西中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2011,12(5):17-18.

[2]閆巧娟,韓魯佳,江正強(qiáng).纖維素酶法提取黃芪多糖[J].中草藥,2005,36(12):1804-1807.

[3]王士中.黃芪的糙皮側(cè)耳發(fā)酵及其發(fā)酵液的藥效研究[D].蘭州:蘭州大學(xué),2008.

[4]楊莉,王志華,陶健生.黃芪中黃芪多糖含量測定方法的比較[J].中國醫(yī)藥工業(yè)雜志,2005,36(9):562-563.

[5]鐘方曉,任海華,李巖.多糖含量測定方法比較[J].時(shí)珍國醫(yī)國藥,2007,18(8):1916-1917.

[6]姜良,趙長琦.中醫(yī)藥與微生態(tài)學(xué)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2008:26-30.

[7]李紅民,黃仁泉,王亞洲.提高黃芪多糖提取收率的工藝研究[J].西北大學(xué)學(xué)報(bào),2000,30(6):509-510.

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