王軍,常江,蔣敢(武警陜西省總隊醫院,西安710054)
RNAi沉默KDM2A基因對人肝癌MHCC-97H細胞增殖、侵襲及遷移的影響
王軍,常江,蔣敢
(武警陜西省總隊醫院,西安710054)
摘要:目的探討沉默KDM2A基因對人肝癌MHCC-97H細胞增殖、侵襲及遷移的影響。方法利用RT-PCR法檢測KDM2A在肝癌細胞系和正常肝細胞系中的表達;分別將KDM2A-siRNA 1#、KDM2A-siRNA 2#和NC轉入KDM2A表達量高的MHCC-97H細胞中,利用RT-PCR法檢測KDM2A的沉默率;采用MTT法檢測細胞的增殖能力;采用Transwell實驗檢測細胞侵襲和遷移能力。結果KDM2A在肝癌MHCC-97H細胞系中高表達; KDM2A-siRNA 1#和KDM2A-siRNA 2#的沉默率分別為35.2%和46.8%;沉默KDM2A后MHCC-97H細胞的增殖能力、侵襲遷移能力明顯降低(P均<0.05)。結論RNAi沉默KDM2A基因表達能抑制MHCC-97H細胞的增殖、侵襲和遷移。
關鍵詞:肝腫瘤; KDM2A基因;細胞增殖;侵襲遷移
肝癌是目前最為常見惡性腫瘤之一,占全世界腫瘤發生率的第六位,其惡性程度高、預后差[1]。研究[2]發現,在肝癌發生、發展過程中經歷一系列的遺傳學和表觀遺傳學改變。KDM2A是一種組蛋白去甲基化酶,具有催化組蛋白上的亮氨酸殘基發生去甲基化修飾的功能,從而調控基因表達。KDM2A在多種腫瘤中高表達,與腫瘤的增殖、侵襲及轉移能力相關[3,4]。我們利用RNAi技術沉默KDM2A基因在肝癌細胞系MHCC-97H中的表達,探討KDM2A被沉默后細胞的增殖、遷移和侵襲能力改變情況,為進一步探索肝癌發生發展的分子機制提供依據。
1.1材料人肝癌細胞系MHCC-97H(上海復旦大學肝癌研究所)、SMCC-7721、Huh7、HepG2和人正常肝細胞系HL-7702(上海中科院細胞庫)。DMEM培養液,胎牛血清(Gibco公司)??俁NA的提取與逆轉錄及cDNA擴增均采用Takara(中國)試劑盒。KDM2A和內參β-actin引物均由上海生工合成。KDM2A上游引物: 5'-CCAAAGGTGCGGGTTCCTAC-3',下游引物: 5'-GGCTCCTGACACAATCGGG-3'。Lipofectamine 2000(Invitroge公司),KDM2A siRNA、siRNA-NC(吉瑪,上海)。
1.2細胞培養及轉染肝癌細胞系及正常肝細胞系均用含10 %胎牛血清的DMEM培養液培養,培養條件為37℃、5 % CO2、飽和濕度。取對數生長期細胞進行轉染,具體操作按Lipofectamine 2000說明書進行。
1.3細胞總RNA的提取及cDNA的合成轉染48 h后采用Takara試劑盒從細胞中提取細胞總RNA,具體操作參見試劑盒說明書。提取出的RNA置于-80℃低溫冰箱備用。使用Takara公司逆轉錄試劑盒,按說明書進行cDNA合成。
1.4 KDM2A基因表達檢測采用RT-PCR法。使用實時定量PCR試劑盒,按說明書操作。PCR反應體系: 2×SYBR Premix Ex TaqⅡ12.5 μL,目的基因正義鏈、反義鏈引物各1 μL,cDNA模板2 μL,無RNAase水8.5 μL,總反應體系25 μL。PCR反應在IQ5實時定量PCR儀上進行。PCR反應條件: 95℃預變性3min,95℃變性5 s,59℃退火延伸40 s,擴增40個循環,建立溶解曲線。每個反應孔設3個復孔,采用儀器自帶分析軟件,運用2-ΔΔCT法分析KDM2A基因相對表達量,以β-actin作為內參照。分別將KDM2A-siRNA 1#(KDM2A-siRNA 1#組)、KDM2A-siRNA 2#(KDM2A-siRNA 2#組)和NC(NC 組)轉入KDM2A表達量最高的肝癌細胞系中,利用RT-PCR檢測KDM2A在上述三組細胞中的表達量。選取沉默率高的細胞進行后續實驗。
1.5細胞增殖力檢測將轉染KDM2A-siRNA和siRNA-NC后的細胞以2×103個/孔接種于96孔板中培養,每組設5個復孔,鋪5塊96孔板。分別于
接種后第1、2、3、4、5天各取1塊96孔板,每孔加入MTT溶液20 μL,37℃孵育4 h后,避光吸棄上清液,然后每孔加入150 μL的DMSO,輕微振蕩10min后于酶聯免疫檢測儀490 nm處測量并記錄每孔的光密度(OD)值。取5復孔平均OD值,根據數據繪制細胞增殖曲線。
1.6細胞遷移和侵襲能力檢測將轉染KDM2A-siRNA和siRNA-NC后的細胞以2×104個/室接種于8 μm厚的Transwell小室進行細胞遷移和侵襲實驗。按1∶6比例稀釋Matrigel基質膠,吸取100 μLmatrigel稀釋液加入上層小室,37℃靜置30min后水化30min。遷移實驗中無需鋪基質膠。上室用無血清培養基培養細胞,下室加入500 μL含10%胎牛血清的DMEM培養液,置于培養箱中培養。24 h后,吸棄小室內培養液,95%乙醇固定細胞10min,擦除上室中細胞,0.5 %的結晶紫染色30min。200倍光鏡下分別取10個視野進行計數和統計學分析。1.7統計學方法采用SPSS13.0統計軟件。計量數據以珋x±s表示,采用獨立樣本t檢驗或卡方檢驗進行比較。P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 KDM2A在肝癌細胞系中的表達KDM2A在肝癌細胞系HepG2、Huh7、SMCC-7721和MHCC-97H的表達(1.96±0.096、2.48±0.108、3.24± 0.450、5.62±0.576)均明顯高于正常肝細胞系HL-7702(1.0±0.087),且在MHCC-97H中表達最高(P <0.05)。
2.2 KDM2A-siRNA的沉默率KDM2A-siRNA 1#、KDM2A-siRNA 2 #的沉默率分別為35.2 %和46.8%,兩者比較,P<0.05。
2.3 KDM2A-siRNA對肝癌細胞增殖的影響收集到KDM2A-siRNA 2 #細胞5個時間點的OD值(0.350±0.011、0.593±0.019、0.672±0.020、0.852±0.021、1.159±0.014)和NC組細胞5個時間點的OD值(0.359±0.011、0.664±0.039、0.849 ±0.014、1.094±0.020、1.560±0.025),繪制出兩組細胞的生長曲線。與NC組相比,KDM2A-siRNA 2#組細胞增殖速度明顯減慢(P均<0.05),見圖1。2.4 KDM2A-siRNA對肝癌細胞遷移和侵襲的影響
NC組侵襲和遷移的細胞數量分別為(58±6)個/視野和(67±8)個/視野,KDM2A-siRNA 2#組分別為(29±5)個/視野和(35±4)個/視野,兩組比較P均<0.05。

圖1 NC組、KDM圖2A-siRNA 圖2#組MHCC-圖97H細胞生長曲線
肝癌是目前臨床最常見的惡性腫瘤之一,具有惡性程度高、進展速度快、治療復雜、生存時間短等特點。肝癌的發生發展經歷癌基因ras、myc等的激活[5]和抑癌基因p53、Rb[6]等的失活。近年來研究[7]表明表觀遺傳學的改變亦參與到肝癌發生發展過程中,如DNA甲基化修飾、組蛋白修飾等。組蛋白甲基化修飾是一種重要的表觀遺傳學修飾方式,由組蛋白賴氨酸和精氨酸甲基轉移酶所介導,可調節基因的轉錄[8]。Hamamoto等[9]發現H3K4甲基化SMYD3在肝癌中高表達,并促進癌細胞增殖; Fan等[10]實驗表明,SUV39H1的高表達增加肝癌細胞的遷移能力,敲除SUV39H1可明顯抑制肝癌細胞增殖; He等[11]實驗發現,H3K4me3在早期肝癌的表達水平越高,預后越差,可作為判定預后的標志??梢娊M蛋白的甲基化在肝癌發生發展過程中有重要作用。
KDM2A亦可稱為FBL7、FBXL11、FBL11或JHDM1A,具有E3連接酶的F-box結構域和組蛋白去甲基化結構域,具有催化單甲基化或二甲基化的組蛋白H3K36發生去甲基化的作用,進而抑制基因的轉錄[12]。在細胞有絲分裂過程中,KDM2A參與維持絲粒完整性和基因組穩定性[13]。最近研究發現,KDM2A在肺癌和胃癌高表達,具有促進細胞增殖和侵襲遷移的能力,起到促癌基因的作用,而沉默KDM2A表達后,能抑制肺癌和胃癌的發生發展[4,14]。
本研究發現KDM2A在肝癌細胞系中均高表達,而在MHCC-97H中表達最高。隨后利用RNAi技術成功沉默KDM2A在肝癌細胞中的表達,MTT 和Transwell實驗表明,沉默KDM2A表達后能抑制肝癌細胞的增殖、侵襲和遷移。后續實驗我們將進一步驗證KDM2A在肝癌組織中的表達,并探索其調控肝癌發生發展的可能分子機制。
參考文獻:
[1]Forner A,Llovet JM,Bruix J.Hepatocellular carcinoma[J].Lancet,2012,379(9822): 1245-1255.
[2]Puszyk WM,Trinh TL,Chapple SJ,et al.Linkingmetabolism and epigenetic regulation indevelopment of hepatocellular carcinoma [J].Lab Invest,2013,93(9): 983-990.
[3]Wagner KW,Alam H,Dhar SS,et al.KDM2A promotes lung tumorigenesis by epigenetically enhancing ERK1/2 signaling[J].J Clin Invest,2013,123(12): 5231-5246.
[4]Huang Y,Liu Y,Yu L,et al.Histonedemethylase KDM2A promotes tumor cell growth andmigration in gastric cancer[J].Tumour Biol,2015,36(1): 271-278.
[5]Shiraha H,Yamamoto K,Nambam.Human hepatocyte carcinogenesis(review)[J].Int J Oncol,2013,42(4): 1133-1138.
[6]Teufel A,Staib F,Kanzler S,et al.Genetics of hepatocellular carcinoma[J].World J Gastroenterol,2007,13(16): 2271-2282.
[7]Ma L,ChuamS,Andrisani O,et al.Epigenetics in hepatocellular carcinoma: an update and future therapy perspectives[J].World J Gastroenterol,2014,20(2): 333-345.
[8]Mikkelsen TS,Kum,JaffedB,et al.Genome-widemaps of chromatin state in pluripotent and lineage-committed cells[J].Nature,2007,448(7153): 553-560.
[9]Hamamoto R,Furukawa Y,Moritam,et al.SMYD3 encodes a histonemethyltransferase involved in the proliferation of cancer cells[J].Nat Cell Biol,2004,6(8): 731-740.
[10]FandN,Tsang FH,Tam AH,et al.Histone lysinemethyltransferase,suppressor of variegation 3-9 homolog 1,promotes hepatocellular carcinoma progression and is negatively regulated bymicroRNA-125b[J].Hepatology,2013,57(2): 637-647.
[11]He C,Xu J,Zhang J,et al.High expression of trimethylated histone H3 lysine 4 is associated with poor prognosis in hepatocellular carcinoma[J].Hum Pathol,2012,43(9): 1425-1435.
[12]Pfau R,Tzatsos A,Kampranis SC,et al.Members of a family of JmjCdomain-containing oncoproteins immortalize embryonic fibroblasts via a JmjCdomain-dependent process[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(6): 1907-1912.
[13]Frescasd,Guardavaccarod,Kuchay SM,et al.KDM2A represses transcription of centromeric satellite repeats andmaintains the heterochromatic state[J].Cell Cycle,2008,7(22): 3539-3547.
[14]Dhar SS,Alam H,Li N,et al.Transcriptional repression of histonedeacetylase 3 by the histonedemethylase KDM2A is coupled to tumorigenicity of lung cancer cells[J].J Biol Chem,2014,289(11): 7483-7496.
收稿日期:( 2015-04-18)
文章編號:1002-266X(2015)33-0030-03
文獻標志碼:A
中圖分類號:R735.7
doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.33.010