雞傳染性貧血病的流行病學診斷與防控

摘 要：雞傳染性貧血（Chicken Infectious Anemia，CIA），是由雞傳染性貧血病毒（Chicken Infectious Anemia Virus，CIAV）誘發的一類具有免疫抑制特性的疫病。該病毒侵入機體后，會干擾雞的免疫系統正常功能，使得雞群對其他病原體的抵抗力下降，進而容易繼發感染多種疾病，給養雞業帶來嚴重的經濟損失。對于該病的診斷主要通過臨床診斷、病理診斷與實驗室診斷結合的方式進行。對雞群做好疫苗接種、飼養管理以及病雞的對癥治療，可有效預防該病傳播以及減少經濟損失。

關鍵詞：雞傳染性貧血；流行病學；診斷；防控

1979年，日本率先報道了CIA，此后，歐洲、亞洲以及非洲等地陸續成功分離出CIAV毒株。在我國，CIAV的分離工作由崔現蘭等人于哈爾濱完成，此項成果為后續深入研究我國雞傳染性貧血的發病機制、防控策略等諸多方面奠定了基礎，對家禽養殖業的健康發展意義重大。該病毒具有較強的抵抗力，對雞的易感性較強，主要通過水平與垂直兩種途徑進行傳播。雞群感染后主要表現為再生障礙性貧血，以及食欲不振、膚色蒼白和生長發育遲緩等為主要臨床特征，病死率通常低于30%。

1 流行病學

1.1 病原

CIAV由于其理化性質與常規的圓環病毒有一定的差異，在1999年，被歸類至新設立的環病毒屬，并且是該病毒屬中獨一無二的成員。這種病毒呈現出二十面體對稱結構，其表面不存在囊膜，病毒粒子的體積頗為微小，直徑大致處于25～26.5 nm。通過電子顯微鏡進行觀測時，可以發現病毒粒子呈現出球形或者六角形的外觀形態，中間凹陷且較為光滑。該病毒對高濃度苯酚相當敏感，暴露于50%的苯酚只需要5 min，即可全部滅活；該病毒對于酸性的抵抗力較強，暴露于pH3.0的環境中，可存活3 h[1]。

1.2 易感動物

CIAV對不同性別、不同品種、不同日齡的雞易感性有所不同，肉雞通常具有生長速度快、養殖密度大等特點，這使得它們對CIAV的易感性相對較高，規模化肉雞養殖過程中，感染概率更大。蛋雞對于CIAV也具有一定的易感性，但相對肉雞，其易感性可能稍低，土雞雖然生活于自然環境中，對于外界的病原體的抵抗力相對較強，但仍能感染CIAV，尤其是在與感染雞群接觸或處于污染環境中時，土雞也容易受到病毒的侵害。

1.3 傳染源與傳播途徑

該病的傳染源涵蓋病雞、隱性感染雞以及帶毒種雞這幾類，病雞在感染病毒后，體內病毒會在多個組織或器官中大量復制，隨后排毒。隱性感染雞不表現臨床癥狀，容易被忽略，增加防控難度，病雞與帶病雞的排泄物、羽毛以及呼吸出來的氣體中含有病毒，會污染環境以及飼料飲水等，是水平傳播的主要傳播方式。帶毒種雞的精液、卵巢以及輸卵管中含有病毒，母雞產下雞胚或進行受精時，可能會導致胚胎感染，使得雛雞出殼時就已攜帶病毒，出生不久即可發病或成為隱性感染者，在雞群中繼續傳播。

2 臨床癥狀及剖檢變化

CIA的最主要癥狀為貧血，病雞表現為雞冠、肉髯、可視黏膜蒼白，其中眼結膜蒼白明顯，嚴重貧血時，病雞的皮膚也變得蒼白，羽毛松亂無光澤、精神沉郁、生長發育受阻、體重明顯減輕。且由于該病屬于免疫抑制性疾病，病雞對其他病原體的抵抗力下降，容易繼發感染其他細菌、病毒性疾病，如大腸桿菌病、新城疫等。部分病雞會出現翅膀、腿部皮下出血，形成紫紅色的出血斑或出血點。剖檢可見骨髓萎縮、顏色變淡、質地柔軟，嚴重時，骨髓幾乎被脂肪組織取代，造血功能嚴重受損。法氏囊在體積、形態等方面出現萎縮跡象，其原本的飽滿度有所下降；胸腺也同樣面臨萎縮問題，無論是組織的緊實程度，還是整體的外觀形態，相較于正常狀態都有不同程度的改變。肝臟、脾臟、腎臟有出血點，部分病雞出現心肌變性，心冠脂肪有出血點。

3 診斷方法

3.1 臨床診斷

根據該病的發病特點，詢問養殖人員發病雞群日齡、發病時間、雞只數量、死亡情況等，并觀察病雞是否有雞冠、肉髯以及可視黏膜蒼白等主要臨床癥狀，若雛雞群體發病時，癥狀明顯，應高度懷疑該雞群暴發了CIA。

3.2 病理診斷

對病死雞進行剖檢，重點觀察骨髓、胸腺、法氏囊等器官，同時觀察病死雞的肝臟、脾臟以及腎臟等器官，是否有出血點以及萎縮。采集病變嚴重的組織，制作病理切片，并觀察組織和細胞的形態變化，若發現骨髓造血細胞減少、脂肪增多，法氏囊和胸腺淋巴細胞大量凋亡、組織細胞結構破壞等，可作為確診的證據。

3.3 實驗室診斷

第一，病毒分離鑒定。采集病雞病變嚴重的組織樣本，接種于馬利克病腫瘤淋巴母細胞（MDCC-MSB1細胞）等細胞培養物，然后通過血清學或分子生物學的方法對分離到的病毒進行鑒定，若檢測到CIAV的特異性抗原或核酸，即可確診。在胡明雪等[2]的研究中，利用2份196日齡疑似感染CIA的病雞肝臟樣本，接種于MDCC-MSB1細胞，將傳代5次的病毒液進行PCR檢測，成功分離出一株CIAV并命名為SDNN2022，在之后的分析中，確定了該株病毒已發生突變，進行雞胚感染實驗，可見病死雞胚與發病雞均表現顯著的CIA臨床癥狀，且證明了該變異毒株具有較強的致病性。

第二，分子生物學檢測。通過提取病雞組織中的DNA，設計特異性引物進行PCR擴增，檢測是否存在CIAV的核酸片段，可快速、準確地確診CIA。在孫文杰等[3]的研究中，根據CIAV的流行株HN1415基因組設計、合成特異性引物及TaqMan探針，并建立了檢測CIAV的TaqMan熒光定量PCR檢測方法，利用該方法檢測不同地區的253份樣本，檢出率為41.18%～62.50%，并證明了該方法的快速及準確性。在王冷眉等[4]的研究中，針對CIAV的VP2基因序列設計了特異性引物與探針，建立了低質粒DNA檢測限（1×102" copies/μL），低溫度要求條件（39 ℃恒溫）以及快速（20 min內）的熒光重組酶聚合酶擴增方法（RPA），該方法與多種雞病毒性傳染病無交叉反應，利用該方法對50份疑似樣本進行檢測，檢測結果與qPCR檢測結果相符。

4 防治措施

4.1 治療

對于該病，主要通過抗病毒、抗感染以及強免疫等手段實現。鹽酸嗎啉胍粉劑與水以1：1 000的形式制作溶液，供雞群自由飲用，連用7 d，抗病毒可對病雞肌肉注射1 mL/kg的黃芪多糖注射液，2次/d，連用3 d，另外可按體重添加強力霉素粉劑2 mL/kg在飼料中，連用7 d，預防繼發性感染。其次可用保護性較好且廣譜的混合處方，乳酸環丙沙星口服液、復合氨基酸口服液以及高純度黃芪多糖進行內服，

2次/d，連用10 d。

另外使用卵黃抗體治療，是目前研究的熱點。在方鑫[1]的研究中，利用CIAV-LY08毒株制備免疫原，使用辛酸法提取了卵黃抗體，經檢測該抗體的安全性與無菌性后，對CIAV攻毒后的雞胚使用卵黃抗體治療，結果顯示，治療組的法氏囊和胸腺指數與攻毒組差異顯著，對CIAV有明顯的抑制效果，并提高了53.3%的成活率。在強玉寧[5]的診治報告中，給確診的病雞以1～2 mL/只的劑量注射高免卵黃抗體，連用5 d，并且按體重使用0.5 g黃芪多糖、25 mg環丙沙星與多維葡萄糖混合后，配制成5 g/L的水溶液，2次/d，連用10 d，使用該方法進行治療后，疫情得到控制并愈后良好。

4.2 防控

第一，疫苗接種。對于CIA的防控，常用疫苗種類有很多。其中強毒疫苗可對91～133日齡的雞群以飲水免疫的方式進行首免，種雞在13～15周進行免疫，可以為雛雞提供母源抗體；滅活疫苗以0.2 mL進行皮下接種，可提高IgG水平；亞單位疫苗以10 μg VP1+5 μg rPiIFN-γ+弗氏不完全佐劑進行皮下接種，可提高IFN-γ水平；DNA疫苗以15 μg pBudVP1-VP2進行肌內注射，中間間隔14 d，免疫3次，可提高抗體滴度；載體疫苗，以1×106TCID50/mL進行滴鼻或口服，3周后進行2免，再間隔4周進行3免，可有效提高抗體滴度[6]。

第二，飼養管理。首先，做好消毒措施，為雞群創造一個舒適、衛生的環境，可有效避免病原滋生與傳播，堅持全進全出模式，減少雞群內CIA的感染與傳播概率。其次，雞群養殖過程中需要保障飼料營養全面、均衡，特別是注意維生素C、維生素E以及微量元素的添加，以增強雞群抵抗力和免疫力。最后，建立嚴格的生物安全措施，對于病死雞，做好淘汰與無害化處理，車輛人員做好限制，避免外源病原侵入造成疫病暴發，種蛋來源嚴格把控，并對種蛋進行嚴格消毒，可用甲醛熏蒸法，以殺滅種蛋表面的病原。

結語

因CIA病原的特殊理化性質，對于常用消毒劑具有較強的抵抗性，且目前還沒有明確的治療措施，給該病的防控增加了難度的同時容易給養殖戶造成損失。現階段，CIA的診斷措施已相對完善，做好抗病毒與預防繼發感染，可提高病雞康復概率。然而，對于大型養殖場來說，及時淘汰病死雞是最有效的手段，從疫苗接種與飼養管理方面入手，能有效減少損失。

參考文獻：

[1] 方鑫.雞傳染性貧血病毒卵黃抗體的制備與應用[D].山東農業大學，2024.

[2] 胡明雪，林雨萌，劉長軍，等.一株雞傳染性貧血病毒的分離鑒定及致病性分析[J].中國預防獸醫學報，2024，46（6）：568-575.

[3] 孫文杰，宋亞鵬，劉琳，等.雞傳染性貧血病毒TaqMan實時熒光定量PCR方法的建立及應用[J].中國獸醫學報，2023，43（6）：1156-1161.

[4] 王冷眉，萬培偉，韓旭，等.雞傳染性貧血病毒實時熒光RPA快速檢測方法的建立[J/OL].中國家禽，1-7[2025-02-07].

[5] 強玉寧.一例蛋雞傳染性貧血與法氏囊病混合感染的診治報告[J].家禽科學，2024，46（5）：64-66.

[6] 汪磊，梁琳，羅潤琪，等.雞傳染性貧血病疫苗研究進展[J].中國畜牧獸醫，2025，52（1）：341-350.